PureLink™ HiPure Plasmid Miniprep Kit
PureLink™ HiPure Plasmid Miniprep Kit
Invitrogen™

PureLink™ HiPure Plasmid Miniprep Kit

PureLink HiPureプラスミド最小プレップキットを使用すると、有機溶媒や塩化セシウムを使用することなく、大腸菌から高純度プラスミドDNAを2時間以内に単離でき、エンドトキシン濃度が低くなります。•迅速 – 2時間以内で浄化された高品質のプラスミドDNA• 効率的詳細を見る
製品番号(カタログ番号)反応数Includes
K210003100プレップ
K21000225プレップ
製品番号(カタログ番号) K210003
価格(JPY)
91,300
Each
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反応数:
100プレップ
価格(JPY)
91,300
Each
カートに追加
PureLink HiPureプラスミド最小プレップキットを使用すると、有機溶媒や塩化セシウムを使用することなく、大腸菌から高純度プラスミドDNAを2時間以内に単離でき、エンドトキシン濃度が低くなります。
•迅速 – 2時間以内で浄化された高品質のプラスミドDNA
• 効率的 – エンドトキシン濃度が低いため、収量が増加します

高純度のプラスミドDNA
PureLink™ HiPureプラスミド最小プレップキットは、1.5~2時間以内にプラスミドDNAを大腸菌から効率的に単離できるように設計されています。このキットには、均一な細孔サイズの小さな粒子で構成される陰イオン交換樹脂を採用し、CsClグラジエントを2回通過する場合と同等レベルでプラスミドDNAを浄化します(図1)。フェノール、クロロホルム、およびCsClなどの汚染物質を除去するための追加手順が不要なため、有害物質への曝露と廃棄が最小限に抑えられます。

高収量で効率的なエンドトキシン除去
PureLink™ HiPureプラスミド最小プレップキットを使用すると、コピー数の多いプラスミドをクローニングする際に、0.1-1 EU/ µgのエンドトキシンレベルで、1~3mLの一晩の大腸菌培養からから最大30µ gの高品質プラスミドDNAを約1時間で浄化できます(表1)。通常、PureLink™ HiPureプラスミド最小プレップキットを使用して単離されたDNAは、サンプルがTris-HCl(pH 7.5)で希釈された場合にA260/A280 > 1.80となり、DNAがダウンストリームアプリケーションに干渉する可能性のあるタンパク質が過度に含まれないことを示しています

単離されたDNAは多数のダウンストリームアプリケーションで使用できます:
浄化されたDNAは超高純度で、哺乳類トランスフェクション(図2)、自動および手動のDNAシーケンシング、PCR増幅、in vitro転写、細菌細胞の形質転換、クローニング、およびラベリングなど、最高純度のDNAを必要とするダウンストリームアプリケーションに適しています。

研究用途にのみご使用ください。診断手順には使用できません。
研究用にのみ使用できます。診断用には使用いただけません。
仕様
最終産物タイプBAC DNA、プラスミドDNA
使用対象(アプリケーション)次世代シーケンシング、トランスフェクション、クローニング、シーケンシング、形質転換、核酸標識化、PCR、in vitro転写
高スループット適合性ハイスループット非対応(手動)
反応数100プレップ
調製スケール< 100 µg未満(小規模)のプラスミドDNA
製品ラインPureLink
製品タイプPlasmid MiniPrep Kit
数量100プレップ
サンプルタイプ細菌の培養
スケールミニ
出荷条件室温
ターゲットBAC DNA、プラスミドDNA
検査時間2時間
フォーマットキット
Isolation Technologyシリカスピンカラム
Unit SizeEach
組成および保存条件
• 50mL再懸濁バッファー(R3)
• 550 µl RNase A
• 50 ml溶解バッファー(L7)
• 40mL沈殿バッファー(N3)
• 250mL平衡バッファー(EQ1)
• 500mL洗浄バッファー(W8)
• 90mL溶出バッファー(E4)
• 15 mL TEバッファー
• 100個のHiPureカラム

すべてのコンポーネントを室温で保管してください。

よくあるご質問(FAQ)

非特異的なバンドを除くためのPCR条件はどのように最適化すればよいでしょうか。

PCR条件の最適化について、いくつかの例を以下に記します:

-プライマーの3’末端付近で相補的な配列がないか確認する。
-アニーリング温度を2-5℃ほど上げ、アニーリング時間も短くする。最初の数サイクルでアニーリング温度に設定し、それ以降は低いアニーリング温度でサイクルを回す。
-Try hot-start protocols.   ホットスタートプロトコルを試す。
-それぞれのプライマーや鋳型の組み合わせに応じてマグネシウム濃度を最適化する。
-汚染DNAからの増幅が起こらないようにするために、エアロゾル混入防止のフィルターつきチップや   UDG(ウラシルDNAグリコシラーゼ)を使用する。

  

I'm getting low/no plasmid DNA after purification using a PureLink HiPure kit, even though there was measurable absorbance. Do you have any suggestions for what I can do?

A common problem encountered with absorbance measurements is turbidity of samples. (This could be caused by residual resin from the column.) If there is insoluble material in the cuvette (not often detected by the naked eye), much of the UV light is not absorbed but scattered, leading to an artificially high UV absorbance reading (at 260 or 280 nm, for example.) If your A260 is high, we recommend that you check the A320 to determine if there is resin in the sample. You can also try to centrifuge or filter (0.2 µm filter) your sample to remove any resin and then recheck the concentration.

I've run out of buffer when using the PureLink HiPure Plasmid Purification Kit (Cat. No. K210018). Can I purchase the buffers separately?

Yes, we would recommend purchasing the PureLink HiPure BAC Buffer Kit (Cat. No. K210018). This kit includes Resuspension Buffer (R3) (250 ml), Lysis Buffer (L7) (250 ml), Precipitation Buffer (N3) (250 ml), and RNase A (20 µg/ml) (5 ml).
You will need to add less RNase A than stated on the bottle label of the R3 buffer in this kit. It says to add 5.6 mL of RNase A. This is the correct amount for the BAC protocol; however, if you are performing standard plasmid isolation, 1.4 mL RNase A should be added.

Plasmid DNA isolated using a PureLink column-based purification kit from an endA+ strain is degraded after a restriction digest. Do you have a suggestion for this?

The HiPure kits should remove all protein from the DNA including endonucleases. For the silica-based PureLink Quick Plasmid Miniprep Kit, we recommend an extra wash with the optional Wash Buffer W10 to remove endonucleases. This solution is not compatible with the HiPure system and should not be used with those kits. Alternatively, heat the eluted DNA in TE for 10 min at 70 degrees C. This should heat-inactivate any contaminating nucleases.

I'm seeing extra bands present after plasmid purification using your PureLink column-based system. What could cause this to happen?

Extra bands can occur when plasmid DNA is nicked and/or permanently denatured. Plasmid DNA that has been nicked (covalently opened) will run slower than supercoiled DNA during electrophoresis. A small amount of this species of DNA is common and is suitable for downstream applications. Permanently denatured DNA will migrate ahead of the supercoiled DNA and may not be suitable for downstream applications. Do not allow the lysis reaction to proceed longer than 5 minutes.

引用および参考文献 (1)

引用および参考文献
Abstract
Role of LRAT on the retinoid isomerase activity and membrane association of Rpe65.
Authors:Jin M, Yuan Q, Li S, Travis GH,
Journal:J Biol Chem
PubMed ID:17504753
Absorption of a photon by a vertebrate opsin pigment induces 11-cis to all-trans isomerization of its retinaldehyde chromophore. Restoration of light sensitivity to the bleached opsin requires chemical re-isomerization of the chromophore via an enzyme pathway called the visual cycle. The retinoid isomerase in this pathway is Rpe65, a membrane-associated ... More