PureLink™ HiPure Plasmid Midiprep Kit
PureLink™ HiPure Plasmid Midiprep Kit
Invitrogen™

PureLink™ HiPure Plasmid Midiprep Kit

PureLink HiPureプラスミド中間プレップキットは、大腸菌からトランスフェクショングレードのプラスミドDNAを単離するように設計されています。中間プレップキットプロトコルは通常、15–25 mLの細菌培養から100–350 µgのプラスミドDNAを、塩化セシウムグラジエントを2回通過する場合と同等のa純度で生成します。PureLink™ HiPureプラスミド中間プレップキットには以下のものが含まれています詳細を見る
製品番号(カタログ番号)数量Includes
K21000425プレップ
K21000550プレップ
製品番号(カタログ番号) K210004
価格(JPY)
42,500
Each
お問い合わせください ›
数量:
25プレップ
PureLink HiPureプラスミド中間プレップキットは、大腸菌からトランスフェクショングレードのプラスミドDNAを単離するように設計されています。中間プレップキットプロトコルは通常、15–25 mLの細菌培養から100–350 µgのプラスミドDNAを、塩化セシウムグラジエントを2回通過する場合と同等のa純度で生成します。PureLink™ HiPureプラスミド中間プレップキットには以下のものが含まれています。

労力と時間の節約 — エンドトキシンやその他の不純物を除去するための余分な操作は必要ありません
高純度の低エンドトキシン製品 — 哺乳類細胞のトランスフェクションに十分な純度
汎用性 — BAC、バクミド、ssM13 DNAなど、あらゆるタイプおよびサイズのプラスミドDNAを化します

プラスミド浄化用の陰イオン交換クロマトグラフィー
PureLink™ HiPureプラスミドDNA浄化キットは、特許取得済みの陰イオン交換樹脂を使用して、CsClグラジエントを2回通過する場合と同等レベルでプラスミドDNAを浄化します。樹脂は、優れた容量と高速な流量、高分離能、高収量、および効率的なエンドトキシン除去を兼ね備えています。プラスミドの準備は通常2未満で完了できます。

汚染物質フリーDNA
塩化セシウムグラジエントプロトコルとは異なり、PureLink™ HiPureプラスミド浄化システムでは、面倒な溶媒を使用して作業したり廃棄したりすることはありません。通常、PureLink™ HiPureプラスミド中間プレップキットを使用して調製したプラスミド DNAのA260/A280比率は>1.80となり、DNAにダウンストリームアプリケーションに鑑賞する可能性のあるタンパク質が過度に含まれていないことを示します。エンドトキシン濃度は通常0.1–1 EU/µg以内であるため、このプラスミドDNAは哺乳類細胞のトランスフェクションに最適です。
研究用にのみ使用できます。診断用には使用いただけません。
仕様
溶出量5 ml
最終産物タイプBAC DNA、プラスミドDNA
使用対象(アプリケーション)次世代シーケンシング、トランスフェクション、クローニング、シーケンシング、形質転換、核酸標識化、PCR、in vitro転写
高スループット適合性ハイスループット非対応(手動)
反応数25プレップ
プラスミド<40 kb、低コピープラスミド、高コピープラスミド、BAC
調製スケール100
製品ラインPureLink
製品タイプPlasmid MidiPrep Kit
純度トランスフェクショングレード
数量25プレップ
サンプルタイプ細菌の培養
出荷条件室温
システムタイプPureLink™
ターゲットBAC DNA、プラスミドDNA
検査時間2時間
収量100-350 μg
フォーマットカラム
Isolation Technology陰イオン交換レジン
Unit SizeEach
組成および保存条件
• 100 ml再懸濁バッファー(R3)
• 550 µl RNase A
• 100 ml溶解バッファー(L7)
• 100 ml沈殿バッファー(N3)
• 250 ml平衡バッファー(EQ1)
• 500 ml洗浄バッファー(W8)
• 125 ml溶出バッファー(E4)
• 15 ml TEバッファー
• 25個のHiPureカラム
• 5個のカラムホルダー

すべてのコンポーネントを室温で保管してください。

よくあるご質問(FAQ)

非特異的なバンドを除くためのPCR条件はどのように最適化すればよいでしょうか。

PCR条件の最適化について、いくつかの例を以下に記します:

-プライマーの3’末端付近で相補的な配列がないか確認する。
-アニーリング温度を2-5℃ほど上げ、アニーリング時間も短くする。最初の数サイクルでアニーリング温度に設定し、それ以降は低いアニーリング温度でサイクルを回す。
-Try hot-start protocols.   ホットスタートプロトコルを試す。
-それぞれのプライマーや鋳型の組み合わせに応じてマグネシウム濃度を最適化する。
-汚染DNAからの増幅が起こらないようにするために、エアロゾル混入防止のフィルターつきチップや   UDG(ウラシルDNAグリコシラーゼ)を使用する。

  

I'm getting low/no plasmid DNA after purification using a PureLink HiPure kit, even though there was measurable absorbance. Do you have any suggestions for what I can do?

A common problem encountered with absorbance measurements is turbidity of samples. (This could be caused by residual resin from the column.) If there is insoluble material in the cuvette (not often detected by the naked eye), much of the UV light is not absorbed but scattered, leading to an artificially high UV absorbance reading (at 260 or 280 nm, for example.) If your A260 is high, we recommend that you check the A320 to determine if there is resin in the sample. You can also try to centrifuge or filter (0.2 µm filter) your sample to remove any resin and then recheck the concentration.

I've run out of buffer when using the PureLink HiPure Plasmid Purification Kit (Cat. No. K210018). Can I purchase the buffers separately?

Yes, we would recommend purchasing the PureLink HiPure BAC Buffer Kit (Cat. No. K210018). This kit includes Resuspension Buffer (R3) (250 ml), Lysis Buffer (L7) (250 ml), Precipitation Buffer (N3) (250 ml), and RNase A (20 µg/ml) (5 ml).
You will need to add less RNase A than stated on the bottle label of the R3 buffer in this kit. It says to add 5.6 mL of RNase A. This is the correct amount for the BAC protocol; however, if you are performing standard plasmid isolation, 1.4 mL RNase A should be added.

Plasmid DNA isolated using a PureLink column-based purification kit from an endA+ strain is degraded after a restriction digest. Do you have a suggestion for this?

The HiPure kits should remove all protein from the DNA including endonucleases. For the silica-based PureLink Quick Plasmid Miniprep Kit, we recommend an extra wash with the optional Wash Buffer W10 to remove endonucleases. This solution is not compatible with the HiPure system and should not be used with those kits. Alternatively, heat the eluted DNA in TE for 10 min at 70 degrees C. This should heat-inactivate any contaminating nucleases.

I'm seeing extra bands present after plasmid purification using your PureLink column-based system. What could cause this to happen?

Extra bands can occur when plasmid DNA is nicked and/or permanently denatured. Plasmid DNA that has been nicked (covalently opened) will run slower than supercoiled DNA during electrophoresis. A small amount of this species of DNA is common and is suitable for downstream applications. Permanently denatured DNA will migrate ahead of the supercoiled DNA and may not be suitable for downstream applications. Do not allow the lysis reaction to proceed longer than 5 minutes.

引用および参考文献 (2)

引用および参考文献
Abstract
Multicopy blaOXA-58 gene as a source of high-level resistance to carbapenems in Acinetobacter baumannii.
Authors:Bertini A, Poirel L, Bernabeu S, Fortini D, Villa L, Nordmann P, Carattoli A,
Journal:Antimicrob Agents Chemother
PubMed ID:17438042
'The mechanisms at the origin of heterogeneous carbapenem resistance levels observed among Acinetobacter baumannii isolates collected in 2005 in a large University Hospital of Rome, Italy, were investigated. These isolates were related and possessed similar plasmids carrying the carbapenem-hydrolyzing oxacillinase gene bla(OXA-58) but showed variable levels of resistance to carbapenems. ... More
Role of LRAT on the retinoid isomerase activity and membrane association of Rpe65.
Authors:Jin M, Yuan Q, Li S, Travis GH,
Journal:J Biol Chem
PubMed ID:17504753
Absorption of a photon by a vertebrate opsin pigment induces 11-cis to all-trans isomerization of its retinaldehyde chromophore. Restoration of light sensitivity to the bleached opsin requires chemical re-isomerization of the chromophore via an enzyme pathway called the visual cycle. The retinoid isomerase in this pathway is Rpe65, a membrane-associated ... More