Zero Blunt™ TOPO™ PCR Cloning Kit for Sequencing, with One Shot™ TOP10 Chemically Competent E. coli
Zero Blunt&trade; TOPO&trade; PCR Cloning Kit for Sequencing, with One Shot&trade; TOP10 Chemically Competent <i>E. coli</i>
Invitrogen™

Zero Blunt™ TOPO™ PCR Cloning Kit for Sequencing, with One Shot™ TOP10 Chemically Competent E. coli

Zero Blunt™ TOPO™ PCR Cloning Kit for Sequencingは、プルーフリーディングポリメラーゼで増幅された、平滑末端PCR産物をシーケンシング用のプラスミドベクターに直接挿入するための詳細を見る
製品番号(カタログ番号)数量
K28754050反応
K2875J1010反応
K28752025反応
製品番号(カタログ番号) K287540
価格(JPY)
144,900
キャンペーン価格
Ends: 26-Dec-2025
241,600
割引額 96,700 (40%)
Each
お問い合わせください ›
数量:
50反応
Zero Blunt™ TOPO™ PCR Cloning Kit for Sequencingは、プルーフリーディングポリメラーゼで増幅された、平滑末端PCR産物をシーケンシング用のプラスミドベクターに直接挿入するための、効率の高い5分間のワンステップクローニング戦略を提供します。各キットは、各反応からより多くのインサート配列とより少ないベクター配列が返るよう特別にデザインされたシーケンシングプライマー部位があるpCR™4Blunt-TOPO™ベクター(図を参照)を使用します。これらのキットには、目的のPCRフラグメントを含む組換えベクターのクローニングおよび選択に必要なすべてのものが含まれています。

pCR™4Blunt-TOPO™ベクターシーケンシング用に最適化
当社は、pCR™4Blunt-TOPO™ベクターから多くのクローニング部位を除去し、シーケンシングプライマー部位とインサート部位の間の距離をわずか33 bpに短縮しました。つまり、シーケンシング反応ではベクター配列が少なく、インサート配列が多くなります。pCR™4Blunt TOPO™ベクターには、一般的なシーケンシングプライマー用の部位として、M13フォワード、M13リバース、T7、T3の4つが含まれています。このキットには、それぞれのアリコートが含まれています。

pCR™4Blunt-TOPO™クローンの選択と操作
The pCR™4Blunt-TOPO™ベクターには、アンピシリンとカナマイシンの両方の耐性マーカーと、ポジティブセレクションのためのLacZα-ccdB遺伝子融合が含まれています。ベクターの最小化されたマルチクローニングサイトには、クローニングされたPCR産物の簡易的な切除のための隣接EcoRI部位と、シーケンシング前にネストされた欠失を生成するための独自のSse8387I部位がまだ含まれています。in vitro転写向けのT7およびT3プロモーターも用意されています。

簡略化されたTOPO™ベースのクローニング
TOPO™クローニング技術を使用すると、特定の配列を含むPCRプライマー、PCR後の手順、ベクターの調製、その他の時間のかかるDNA操作ステップは不要になります。提供されたトポイソメラーゼ荷電ベクターに直接PCR反応を加え、5分間インキュベートして大腸菌コンピテントセルを形質転換するだけです。

効率的なクローニング
目的のインサートを持つクローンを最大95%まで使用することで、少ないクローンをスクリーニングし、時間とコストを節約できます。PCR™4Blunt-TOPO™ ベクターはオーバーハングを生じさせず、平滑端末 PCR 産物を残す耐熱性ポリメラーゼの校正により作成された PCR 産物を効率的にライゲーションします。


最も広く使用™ されているクローニングキットクローニングに関しては、TOPOクローニング技術が10年以上にわたり数千人の科学者にとって信頼できるパートナーとなっています。高速で使いやすく、効率的な TOPO™ クローニングは、さまざまなアプリケーションのために多くの異なるベクターに適用されています。

シーケンシング用Zero Blunt™ TOPO™ PCRクローニングキット—キットフォーマット
Zero Blunt™ TOPO™ PCRクローニングキットは、お客様のニーズに応じてさまざまな利点を提供するさまざまなコンピテントセルと共にご購入いただけます。

• 一般的なクローニング:TOP10細胞(カタログ番号K2875-J10、K2875-20、K2875-40)
• 高効率のクローニング:TOP10 Electrocomp™ Cells(カタログ番号K2880-20、K2880-40)
• 一般的なクローニング、バクテリオファージT1耐性:DH5α-T1R(カタログ番号K2895-20)•迅速な増殖:Mach1™-T1R化学的コンピテント大腸菌(カタログ番号K2835-20)

関連リンク

カスタムベクター構築およびクローニングサービス
プラスミド DNA 精製キット選択ガイド
PCR 試薬、装置、および消耗品
研究用にのみ使用できます。診断用には使用いただけません。
仕様
菌株または酵母株TOP10
細胞タイプケミカルコンピテント
クローニング法Blunt TOPO™
使用対象(アプリケーション)クロマチンバイオロジー
製品ラインOne Shot
製品タイプPCRクローニングキット
プロモーターT7、T3
数量50反応
ベクターBlunt DNA クローニングベクター
フォーマットキット
Unit SizeEach
組成および保存条件
ボックス1:
• Topoisomerase i-activated PCR™4 Blun-TOPO™ ベクター
• 塩溶液
• dNTPs
• コントロールテンプレート
• T3、T7、M13 フォワード、および M13 リバースプライマー
•コント ル PCR プライマー
• 滅菌水

-5~-30℃で保存します。
すべての試薬は、適切に保存すると6ヶ月間安定しています。

ボックス 2 :
•One Shot™ケミカルコンピテントまたはElectrocomp™大腸菌
•S.O.C.培地
•、スーパーコイルpUC19コントロールプラスミド

は、-68~-85℃で保存します。

よくあるご質問(FAQ)

What is the best molar ratio of PCR product:vector to use for TOPO TA cloning? Is there an equation to calculate the quantity to use?

We suggest starting with a molar ratio of 1:1 (insert:vector), with a range of 0.5:1 to 2:1. The quantity used in a TOPO cloning reaction is typically 5-10 ng of a 2 kb PCR product.

Equation:

length of insert (bp)/length of vector (bp) x ng of vector = ng of insert needed for 1:1 (insert:vector ratio)

What is the best ratio of insert:vector to use for cloning? Is there an equation to calculate this?

The optimal ratio is 1:1 insert to vector. Optimization can be done using a ratio of 0.5-2 molecules of insert for every molecule of the vector.

Equation:

length of insert (bp)/length of vector (bp) x ng of vector = ng of insert needed for 1:1 insert:vector ratio

I'm seeing a lot of vector-only colonies when I try to perform a negative control reaction using vector only (no insert) for a TOPO reaction. Is my TOPO vector re-ligating?

Using the vector only for transformation is not a recommended negative control. The process of TOPO-adaptation is not a 100% process, therefore, there will be “vector only” present in your mix, and colonies will be obtained.

I'm trying to clone in my phosphorylated PCR product into a TOPO vector, and I'm getting no colonies. However, when I clone the same product into a TA vector, everything works perfectly. Why is this?

Phosphorylated products can be TA cloned but not TOPO cloned. This is because the necessary phosphate group is contained within the topoisomerase-DNA intermediate complex of the vector. TOPO vectors have a 3' phosphate to which topoisomerase is covalently bound and a 5' phosphate. Non-TOPO linear vectors (TA and Blunt) have a 3' OH and a 5' phosphate. Phosphorylated products should be phosphatased (CIP) before TOPO cloning.

I'm able to get a lot of colonies, however, none contain my insert of interest. What should I do?

You may be cloning in an artifact. TA and TOPO Cloning are very efficient for small fragments (< 100 bp) present in certain PCR reactions. Gel-purify your PCR product using either a silica-based DNA purification system or electroelution. Be sure that all solutions are free of nucleases (avoid communal ethidium bromide baths, for example.)

引用および参考文献 (4)

引用および参考文献
Abstract
Expression of human NAA11 (ARD1B) gene is tissue-specific and is regulated by DNA methylation.
Authors:Pang AL, Clark J, Chan WY, Rennert OM
Journal:Epigenetics
PubMed ID:22048246
'NAA10 gene encodes the catalytic subunit of N(alpha)-acetyltransferase NatA that catalyzes the acetylation of the N-termini of many eukaryotic proteins. A homologous gene called NAA11 is also present in mammalian cells. hNaa10p and hNaa11p are reported to be co-expressed in human cell cultures. In mouse tissues, however, Naa11 transcripts can ... More
Construction and testing of engineered zinc-finger proteins for sequence-specific modification of mtDNA.
Authors:Minczuk M, Kolasinska-Zwierz P, Murphy MP, Papworth MA
Journal:Nat Protoc
PubMed ID:20134433
Engineered zinc-finger proteins (ZFPs) are hybrid proteins developed to direct various effector domains (EDs) of choice to predetermined DNA sequences. They are used to alter gene expression and to modify DNA in a sequence-specific manner in vivo and in vitro. Until now, ZFPs have mostly been used to target DNA ... More
Quantification of adenosine-to-inosine editing of microRNAs using a conventional method.
Authors:Kawahara Y
Journal:Nat Protoc
PubMed ID:22743833
In this protocol, I describe a method for measuring the frequency of adenosine-to-inosine RNA editing of primary, precursor and mature forms of specific microRNAs (miRNAs) derived from the same source. The procedure involves reverse transcription (RT)-PCR amplification of regions containing the editing sites followed by subcloning of the PCR products ... More
Glycosylation of wall teichoic acid in Staphylococcus aureus by TarM.
Authors:Xia G, Maier L, Sanchez-Carballo P, Li M, Otto M, Holst O, Peschel A
Journal:J Biol Chem
PubMed ID:20185825
Wall teichoic acid (WTA) glycopolymers are major constituents of cell envelopes in Staphylococcus aureus and related gram-positive bacteria with important roles in cell wall maintenance, susceptibility to antimicrobial molecules, biofilm formation, and host interaction. Most S. aureus strains express polyribitol phosphate WTA substituted with D-alanine and N-acetylglucosamine (GlcNAc). WTA sugar ... More