Invitrogen™

NuPAGE™ Large Protein Sensitive Staining Kit

HiMark™ 染色済みスタンダードおよび未染色高分子量タンパク質スタンダードは、変性条件下でNuPAGE™ Novexトリス-アセテートゲルを用いた大型タンパク質分析用に特別に設計されています。どちらのスタンダードも、時間を節約するロードアンドゴー形式を提供します。HiMark™ 染色済みスタンダードには詳細を見る

製品番号（カタログ番号）	数量
LP0003	20ゲル

製品番号（カタログ番号） LP0003

価格（JPY）

一括またはカスタム形式をリクエストする

HiMark™ 染色済みスタンダードおよび未染色高分子量タンパク質スタンダードは、変性条件下でNuPAGE™ Novexトリス-アセテートゲルを用いた大型タンパク質分析用に特別に設計されています。どちらのスタンダードも、時間を節約するロードアンドゴー形式を提供します。

HiMark™ 染色済みスタンダード には、ピンクのオリエンテーションバンドが1本と、NuPAGE™トリス-アセテートゲル／SDSバッファーシステムで見かけの分子量31～460 kDa*の8本の青色バンドが含まれています（図1）。電気泳動のモニタリング、ウェスタンブロッティング、未知の大きなタンパク質の分子量の概算に適しています。

HiMark™ 未染色スタンダードは、NuPAGE™ トリス-アセテートゲル／SDSバッファーシステムと併用することで、大型タンパク質の分子量推定において最高の精度を提供します。NuPAGE™ Novex 3～8%および7%トリス-アセテートゲル／SDSバッファーシステムにおいて、40～500 kDaのサイズの9種類のタンパク質から構成されています（図2）。Coomassie™ 染色、シルバー染色、蛍光タンパク質染色により、電気泳動後に視覚化できます。ダウンロード可能な分子量計算ツールは、NuPAGE™ トリス-アセテートゲル上のHiMark™ 未染色スタンダードを使用して、大型タンパク質の分子量を簡単かつ正確に推定できるように設計されています**

いくつかの NuPAGE™ 大型タンパク質スターターキット をご利用いただくことで、高分解能の大型タンパク質の分離および分析に必要なすべての試薬と最適化されたプロトコルが得られます。（表1）。各キットには、NuPAGE™ 3～8%トリス-アセテートゲル、トリス-アセテートSDSバッファーキット、染色試薬またはブロッティング膜、および適切なHiMark™スタンダードのバイアルの2箱が含まれています。

研究用にのみ使用できます。診断用には使用いただけません。

使用対象 (装置)XCell SureLockミニ

数量20ゲル

サンプル充填量25 μL

厚さ1.0 mm

ウェルデザイン1Dウェル

製品ラインNuPAGE

製品タイプタンパク質染色キット

サイズ範囲40 to 500 kDa

Stain Type未染色

Unit SizeEach

組成および保存条件

キットの内容およびコンポーネントの保管条件については、製品マニュアルを参照してください。各キットのコンポーネントも個別にご用意しています。

よくあるご質問（FAQ）

Can I prepare my protein sample with the reducing agent and store it for future use?

DTT is not stable, so it must be added and the reduction performed just prior to loading your samples.

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Protein Gel 1D Electrophoresis Support Center.

My LDS or SDS sample buffer precipitates when stored at 4 degrees C. Can I warm it up? Can I store it at room temperature?

Precipitation of the LDS or SDS at 4 degrees C is normal. Bring the buffer to room temperature and mix until the LDS/SDS goes into solution. If you do not want to wait for it to dissolve, you can store the sample buffer at room temperature.

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How are Bolt gels different than NuPAGE gels?

While they are both Bis-Tris based gels, the chemistries are very different since Bolt gels are optimized for western blotting. Another key difference is the wedge well design of the Bolt gels, which allows larger sample volumes to be loaded.

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I ran my protein under native conditions on a Tris-Glycine gel. It has a pI that is higher than the pH of the Tris-Glycine transfer buffer. Can you offer some tips for transferring it?

- Increase the pH of Tris-Glycine transfer buffer to 9.2, allowing all the proteins below pI 9.2 to transfer towards the anode electrode.
- Use the Tris-Glycine transfer buffer and place a membrane on both sides of the gel. If there are any proteins that are more basic than the pH of the transfer buffer, they will be captured on the extra membrane placed on the cathode side of the gel. Both membranes can then be developed in the same manner.
- Prior to blotting, incubate the gel for 15 minutes in Tris-Glycine transfer buffer containing 0.1% SDS. The small amount of SDS will give the proteins enough charge to move unidirectionally towards the anode and in most cases, should not denature the protein. Proceed with the transfer using regular Tris-Glycine transfer buffer.

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