Oregon Green™ 488 BAPTA-2, AM, cell permeant - Special Packaging
Oregon Green™ 488 BAPTA-2, AM, cell permeant - Special Packaging
Invitrogen™

Oregon Green™ 488 BAPTA-2, AM, cell permeant - Special Packaging

標識カルシウム指示薬は、Ca2+と結合すると蛍光が増加する分子です。Ca2+の流入と放出に続いて細胞内Ca2+を測定したり、生体組織におけるCa2+多光子励起イメージングを含む多くのカルシウムシグナル伝達研究に使用されています。培養細胞を含むディッシュに溶解インジケーターを直接添加することで、これらカルシウムインジケーターのAMエステル型を細胞に添加できます。これらの細胞からの蛍光シグナルは、一般的に蛍光顕微鏡、蛍光マイクロプレートアッセイ、またはフローサイトメトリーを使用して測定されます詳細を見る
製品番号(カタログ番号)数量
O680910 x 50 μg
製品番号(カタログ番号) O6809
価格(JPY)
88,800
Each
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数量:
10 x 50 μg
標識カルシウム指示薬は、Ca2+と結合すると蛍光が増加する分子です。Ca2+の流入と放出に続いて細胞内Ca2+を測定したり、生体組織におけるCa2+多光子励起イメージングを含む多くのカルシウムシグナル伝達研究に使用されています。培養細胞を含むディッシュに溶解インジケーターを直接添加することで、これらカルシウムインジケーターのAMエステル型を細胞に添加できます。これらの細胞からの蛍光シグナルは、一般的に蛍光顕微鏡、蛍光マイクロプレートアッセイ、またはフローサイトメトリーを使用して測定されます。

カルシウム、カリウム、pH、膜電位インジケータなどのイオンインジケータの詳細については、こちらを参照してください›

カルシウムインジケータ(AMエステル)仕様:
•ラベル(Ex/EM):オレゴングリーン™ 488 BAPTA-2(494/523 nm)
•Ca2+結合時の蛍光強度の増加:約100倍
• Ca2+結合時の蛍光増加


Molecular Probes™カルシウムインジケーターの波長スペクトル特性のわずかな変化により
、これらのプローブは可視光によって励起され、励起に必要なエネルギーが低いため、細胞光損傷の可能性が低減されます。一般的に使用されているレーザーベースの装置(共焦点レーザースキャン顕微鏡など)は、これらのインジケータを効率的に励起でき、その放出は、細胞の自動蛍光および散乱バックグラウンドが問題にならないスペクトル領域にあります。

蛍光カルシウム指示薬の選択肢を拡大
™ 当社は、さまざまな実験シナリオで使用するMolecular Probesカルシウム指示薬を幅広く取り揃えています。たとえば、漏出の低減や区画化のためのデキストラン型や、高振幅カルシウムTransitiveを検出するためのBAPTAコンジュゲートなどです。詳細については、Molecular Probesハンドブックの「可視光で励起された蛍光Ca2+インジケータ」—セクション19.3™を参照してください。

UV-exitable Ca2+指示薬、タンパク質ベースCa2+指示薬、Ca2+指示薬のコンジュゲート用、その他の金属イオン(Mg2+、Zn2+)の蛍光ベースのインジケータ については、Molecular Probesハンドブック™のCa 2+、Mg 2+、Zn 2+およびその他の金属イオンのインジケータ—第19章を参照してください。

研究用途にのみご使用ください。動物またはヒトの治療または診断用途には使用できません。
研究用にのみ使用できます。診断用には使用いただけません。
仕様
検出法蛍光
染色剤タイプ蛍光色素ベース
数量10 x 50 μg
出荷条件室温
使用対象(アプリケーション)細胞の生存率と増殖
使用対象 (装置)蛍光顕微鏡, フローサイトメーター, マイクロプレートリーダー
製品ラインOregon Green
製品タイプ染色
Unit SizeEach
組成および保存条件
フリーザー(-5℃~-30℃)に保存し、遮光してください。

引用および参考文献 (4)

引用および参考文献
Abstract
Confocal Ca2+ imaging of organelles, cells, tissues, and organs.
Authors:Williams DA, Bowser DN, Petrou S
Journal:Methods Enzymol
PubMed ID:10506988
Mitochondrial DNA mutations affect calcium handling in differentiated neurons.
Authors:Trevelyan AJ, Kirby DM, Smulders-Srinivasan TK, Nooteboom M, Acin-Perez R, Enriquez JA, Whittington MA, Lightowlers RN, Turnbull DM,
Journal:Brain
PubMed ID:20207702
Mutations in the mitochondrial genome are associated with a wide range of neurological symptoms, but many aspects of the basic neuronal pathology are not understood. One candidate mechanism, given the well-established role of mitochondria in calcium buffering, is a deficit in neuronal calcium homoeostasis. We therefore examined calcium responses in ... More
Second harmonic and sum frequency generation imaging of fibrous astroglial filaments in ex vivo spinal tissues.
Authors:Fu Y, Wang H, Shi R, Cheng JX
Journal:Biophys J
PubMed ID:17293404
Sum frequency generation (SFG) and second harmonic generation (SHG) were observed from helical fibrils in spinal cord white matter isolated from guinea pigs. By combining SFG with coherent anti-Stokes Raman scattering microscopy, which allows visualization of myelinated axons, these fibers were found to be distributed near the surface of the ... More
PLCγ-dependent mTOR signalling controls IL-7-mediated early B cell development.
Authors:
Journal:Nat Commun
PubMed ID:29133930