Pierce™ Fluorescent Protease Assay Kit

Thermo Scientific Pierce蛍光プロテアーゼアッセイキットは、サンプル中の全プロテアーゼ活性を測定し、プロテアーゼ分離手順の進捗を評価したり、生物学的サンプル中のプロテアーゼ汚染を定量する手段を提供します。このキットには、蛍光共鳴エネルギー伝達（FRET）と標準蛍光光度計詳細を見る

製品番号（カタログ番号）	数量
23266	1000テストキット

製品番号（カタログ番号） 23266

価格（JPY）

40,300

온라인 행사

Ends: 27-Mar-2026

67,300

割引額 27,000 (40%)

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1000テストキット

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Thermo Scientific Pierce蛍光プロテアーゼアッセイキットは、サンプル中の全プロテアーゼ活性を測定し、プロテアーゼ分離手順の進捗を評価したり、生物学的サンプル中のプロテアーゼ汚染を定量する手段を提供します。

このキットには、蛍光共鳴エネルギー伝達（FRET）と標準蛍光光度計、または蛍光偏光（FP）のいずれかを用いてサンプル中のプロテアーゼ活性を評価するための基質として、フルオレセイン標識カゼインが含まれています。FTCC-カゼインは天然カゼインで、フルオレセインイソチオシアン酸（FITC）の過剰モルを使用して標識されています。このように強く標識されたインタクトタンパク質基質の蛍光特性は、プロテアーゼによる消化を経て劇的に変化し、その結果、タンパク質分解の測定可能な指標となります。

蛍光プロテアーゼアッセイキットの特徴：

•カゼイン基質— カゼインを切断してペプチドフラグメントにするプロテアーゼの活性を測定
• トリプシン標準液— 一般的に認められているリファレンスであるトリプシンに対するプロテアーゼ活性を定量
• 感度— 無修飾カゼインの形態を使用したアッセイの1,000倍の感度
• シンプルで迅速— 試験管およびマイクロプレートプロトコルが1時間未満で完了
• 均一— 添加ステップのみ、分離、転写、停止ステップは不要
• カスタマイズ可能— 時間、温度、および pH を簡単にカスタマイズでき、目的のプロテアーゼの感度を最適化

アプリケーション：
• プロテアーゼ精製の機能的完全性と全体的な進行を評価
• タンパク質サンプル中のプロテアーゼ混入を定量化
• トリプシンと比較して、通常と異なるプロテアーゼの活性を特性化
• プロテアーゼの機能と活性に影響するバッファー条件を評価

その他の仕様：
• 基質：フルオレセイン標識カゼイン（FITC-カゼイン）、製品番号23267として別売り
•アッセイの基礎：蛍光共鳴（FRET）または蛍光偏光（FP）の変化
•測定：フルオレセイン励起および発光フィルター付き装置（485/538nm）

関連製品
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FITCカゼイン、Pierce™ 蛍光プロテアーゼアッセイキット

研究用途にのみご使用ください。診断目的には使用できません。

アッセイタンパク質活性アッセイ

使用対象（アプリケーション）蛍光偏光、FRET

使用対象 (装置)マイクロプレートリーダー

製品ラインPierce

製品タイプProtein Activity Assay

数量1000テストキット

基質カゼイン

基質特性タンパク質ベースの基質

基質タイププロテアーゼ基質

対応可能対象2000 Microplate Assays

ターゲットプロテアーゼ

検出法蛍光

イムノアッセイキットのフォーマット96ウェルプレート

標識タイプ従来の色素

Unit SizeEach

組成および保存条件

対応範囲：フルオレセインフィルターセット（ex/em 485 nm/538 nm）を取り付けた装置を使用してマイクロプレートアッセイ2,000回分
• FTCカゼイン、凍結乾燥、2.5 mg
• TPCKトリプシン標準液、50 mg
• TBSバッファーパック（500 mL作成）、1パック

FTCカゼインおよびTPCKトリプシンは4℃で保存

よくあるご質問（FAQ）

In the Fluorescent Protease Assay Kit (Cat. No. 23266), I had poor reproducibility within my plate or across experiments. What could be the cause?

Variations in pipetting can directly contribute to assay error, especially in the FRET-mode, because the working reagent itself has some intrinsic background fluorescence. Use reverse-pipetting or other techniques to prevent the introduction of small air bubbles into the plate wells. In FP-mode, if the sample matrix contains very high amounts of interfering fluorescent material, better quality results may be obtained by subtraction of buffer blanks from the data used for the mP calculation. In addition, FP detection is very sensitive to the position of the optical head in relation to the center of the well with respect to its X and Y coordinates, especially with 384-well plates. This position-artifact may be identified as reproducible patterned data by positioning the plate for a second reading 180 degrees relative to the first reading. Ensure that the instrument read positioning settings are appropriate for the type of plate chosen.

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Protein Assays and Analysis Support Center.

In the Fluorescent Protease Assay Kit (Cat. No. 23266), I saw no change in signal. What can I do?

Ensure that the instrument gain setting is sufficiently low to avoid saturating the instrument detector. For fluorescence readers containing multiple excitation/emission positions, ensure that “top/top” is selected for excitation/emission settings.

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Do you offer any protein assays that are protein specific?

We offer several “specialty” protein assays including: Protease assay kits (Cat. Nos. 23263 and 23266), Glycoprotein Carbohydrate Estimation Kit (Cat. No. 23260), Phosphoprotein Phosphate Estimation Kit (Cat. No. 23270), Quantitative Peroxide assay kits (Cat. Nos. 23280 and 23285), and Easy-Titer Assay kits for IgG and IgM.

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