DH10B Competent Cells
DH10B Competent Cells
Thermo Scientific™

DH10B Competent Cells

Thermo Scientific DH10Bコンピテントセルは、高効率な化学的コンピテントE. coliセルです。DH10B株は、メチルシトシン、5-ヒドロキシメチルシトシン、およびメチルアデニンを含むDNAのクローニングに適しており、原核生物および真核生物のゲノムDNAを効率的にクローニングできます詳細を見る
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製品番号（カタログ番号）数量
EC011310 x 100 μL
製品番号（カタログ番号） EC0113
価格（JPY）
24,100
Each
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数量:
10 x 100 μL
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Thermo Scientific DH10Bコンピテントセルは、高効率な化学的コンピテントE. coliセルです。DH10B株は、メチルシトシン、5-ヒドロキシメチルシトシン、およびメチルアデニンを含むDNAのクローニングに適しており、原核生物および真核生物のゲノムDNAを効率的にクローニングできます。これらの細胞は、遺伝子バンクの構築やプラスミド由来ベクターを用いたcDNAライブラリの生成に最適です。φ80dlacZΔM15マーカーは、pUCまたは同等のベクターから得られたβ-galactosidase遺伝子のα相補性を提供し、Bluo-GalまたはX-Galを含む細菌寒天プレート上で青/白コロニースクリーニングを可能にします。

•高い形質転換効率：>1x109 cfu/μg pUC19 DNA
•日常およびハイスループットのクローニングアプリケーションに適しています
•青／白コロニースクリーニングが可能
•便利な、バイアルパッケージごとに2反応
•S.O.C.Outgrowth培地を含みます。

アプリケーション
DH10Bコンピテントセルは、高い形質転換効率を必要とするさまざまなアプリケーションに適しています。
•原核・真核生物由来の効率的なDNAクローニング
•大きなプラスミドとBACのクローニング
•プラスミド由来のベクターを用いたcDNAライブラリーの作成に最適です。
•部位特異的変異誘発

遺伝子型
F– mcrA Δ(mrr-hsdRMS-mcrBC) φ80lacZΔM15 ΔlacX74 recA1 endA1 araD139 Δ (ara-leu)7697 galU galK λ– rpsL(StrR) nupG

注：CloneJET PCRクローニングキットとの使用に最適化（カタログ番号 K1231、K1232）およびPhusion Site-Directed Mutagenesis Kit（カタログ番号 F541）、コンボバージョンで入手できます（カタログ番号 K123120、K123240、F542）。
研究用途にのみご使用ください。診断目的には使用できません。
仕様
菌株または酵母株DH10B™
青／白スクリーニング可
細胞タイプケミカルコンピテント
メチル化DNAのクローニング可
F'エピソームを含むF’エピソームが欠落しています
効率高効率（>1x10^9 cfu/μg pUC19 DNA）
使用対象（アプリケーション）クローニング
高スループット適合性ハイスループットに対応しません
ライブラリcDNA
製品ラインThermo Scientific
製品タイプコンピテントセル
増殖ccdBベクターccdBベクターの増殖には使用できません
数量10 x 100 μL
出荷条件ドライアイス
フォーマットチューブ
種E. coli
Unit SizeEach
組成および保存条件
• 10 x DH10Bコンピテントセル（100 µL）
• pUC19 DNA（50 µL）（10 pg/µL）
• S.O.C.培地（5 mL）

-80℃で保存してください。

よくあるご質問（FAQ）

Can I store my competent E. coli in liquid nitrogen?

We do not recommend storing competent E. coli strains in liquid nitrogen as the extreme temperature can be harmful to the cells. Also, the plastic storage vials are not intended to withstand the extreme temperature and may crack or break.

How should I store my competent E. coli?

We recommend storing our competent E. coli strains at -80°C. Storage at warmer temperatures, even for a brief period of time, will significantly decrease transformation efficiency.

I'm getting overgrowth of colonies. Why?

Ensure that you are using the correct antibiotic at the appropriate concentration. Additionally, make sure the antibiotic is not expired. If colonies exhibit unexpected morphologies, contamination could be a factor. Check your S.O.C. medium and LB growth medium.

I'm only getting white colonies, but none of the clones have an insert. What can I do?

Here are a few suggestions:

- Small fragments/linkers are cloning in to your vector instead of your insert; to correct this, gel-purify the insert before ligation
- Ensure that the correct concentrations of X-gal and/or IPTG (if vector contains the lacIq marker) are used
- If spreading X-gal and/or IPTG on your plate, allow sufficient time for the reagents to diffuse into the plate
- Incubate your plate for a longer period to ensure full color development

I'm getting no colonies at all on my plates. Can you help?

We recommend trying the following:
- Carry out the puc19 transformation control; this gives you information about the performance of the cells.
- Check plates for expiration and correct media used (LB/agar).
- Confirm that the correct antibiotic and concentration was used.

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