ProcartaPlex™ NHP Cytokine & Chemokine Panel, 30plex
ProcartaPlex™ NHP Cytokine & Chemokine Panel, 30plex
Invitrogen™

ProcartaPlex™ NHP Cytokine & Chemokine Panel, 30plex

非ヒト霊長類サイトカイン&ケモカイン30‐プレックスProcartaPlexパネルは、Luminex xMAP技術を使用して1つのウェルで30つのタンパク質ターゲットを分析することにより、免疫機能の研究を可能にします。このパネルは 非ヒト霊長類サイトカイン/ケモカイン/増殖因子37-プレックスProcartaPlexパネルのサブセットである3つのモジュール式サブパネルで構成されています。(カタログ番号EPX370-40045-901)。このキットは詳細を見る
製品番号(カタログ番号)数量
EPX300-40044-90196テスト
製品番号(カタログ番号) EPX300-40044-901
価格(JPY)
937,700
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数量:
96テスト
非ヒト霊長類サイトカイン&ケモカイン30‐プレックスProcartaPlexパネルは、Luminex xMAP技術を使用して1つのウェルで30つのタンパク質ターゲットを分析することにより、免疫機能の研究を可能にします。このパネルは 非ヒト霊長類サイトカイン/ケモカイン/増殖因子37-プレックスProcartaPlexパネルのサブセットである3つのモジュール式サブパネルで構成されています。(カタログ番号EPX370-40045-901)。このキットは、37プレックスパネルの標的に対応する他のサブパネルまたは個別シンプレックスアッセイと完全に組み合わせ可能です。

ProcartaPlex事前設定済みパネルは、検体の組み合わせ性、干渉、交差反応性について広範にテストされており、最高レベルの検証と精度を提供します。すべての ProcartaPlex パネルには、アッセイの実行に必要な試薬が付属しています。

ProcartaPlexマルチプレックスパネルは、6 種の生物種(ヒト、マウス、ラット、ヒト以外の霊長類、ブタ、イヌ)にわたって複数のフォーマットで利用可能です。詳細と利用可能な製品については、ProcartaPlexイムノアッセイページをご覧ください。

ターゲットリスト[ビーズ領域]:
Tヘルパー:GM-CSF [44], IFNγ [43], IL-1β [18], IL-2 [19], IL-4 [20], IL-5 [21], IL-6 [25], IL-8 (CXCL8) [27], IL-10 [28], IL-12p70 [34], IL-13 [35], IL-17A (CTLA-8) [36], IL-18 [66], IL-23 [63], TNFα [45]
サイトカイン:CD40L [74], G-CSF (CSF-3) [42], IFNα [48], IL-1RA [38], IL-7 [26], IL-15 [65]
ケモカイン:BLC(CXCL13)[15]、エオタキシン(CCL11)[33]、IP-10(CXCL10)[22]、I-TAC(CXCL11)[46]、MCP-1(CCL2)[51]、MIG (CXCL9)[54]、MIP-1α(CCL3)[12]、MIP-1β(CCL4)[47]、SDF-1α[13]

Luminexプラットフォーム用ProcartaPlexアッセイについて
ProcartaPlex免疫測定法はサンドイッチELISAの原理に基づいており、1つのタンパク質の異なるエピトープに結合する2つの高特異性抗体を使用して、Luminex装置により、すべてのタンパク質標的を同時に定量できます。ProcartaPlexマルチプレックスアッセイは、25 µLの血漿または血清、または50 µLの細胞培養上清のみが必要で、わずか4時間で分析結果が得られます。

次の特長があります。
• 再現性と信頼性の高い結果—タンパク質標的の結合性や交差反応性試験など、業界最高水準のパネルとして検証済み
• サンプルあたりの結果の増加—25~50 µLのサンプル1つで複数のタンパク質標的を同時に測定
• 定評のあるLuminex技術高参照マルチプレックスプラットフォームによるタンパク質の検出および定量

ProcartaPlexアッセイでは、Luminex xMAP(多項目同時測定プロファイリング)技術を利用して、25~50 µLのサンプル1つで最大65のタンパク質標的(血漿、血清、細胞培養上清、およびその他の体液)を同時に検出および定量できます。

ProcartaPlex アッセイの Luminex ビーズは、赤および赤外フルオロフォアの正確な比率で内部染色されており、Luminex xMAP 検出システム(Luminex 200、FLEXMAP 3D、MAGPIX など)により識別できるスペクトル的に固有なシグネチャを生じます。サンドイッチ ELISA と同様に、ProcartaPlex アッセイはマッチした抗体ペアを使用して目的のタンパク質を同定します。マルチプレックスアッセイでは、各スペクトルに固有のビーズは単一の標的タンパク質に特異的な抗体で標識され、結合したタンパク質はビオチン化抗体およびストレプトアビジン-R-フィコエリトリン( RPE)で同定されます。タンパク質特異的抗体の特異的なビーズへの結合により、1 つのウェルで複数のターゲットの分析が可能になります。

ProcartaPlex アッセイと ELISA の最も大きな違いは、ProcartaPlex アッセイの捕捉抗体がビーズに結合され、マイクロプレートウェルに吸着されないことです。そのため、ProcartaPlex アッセイ試薬は溶液中で自由に浮遊します。たとえば、Luminex 200装置は検出用に2つのレーザーを備えています。1つは各ビーズのスペクトル特性を識別するためのレーザーで、もう1つはサンプル中のタンパク質量に比例したRPE蛍光量を定量するためのレーザーです。ProcartaPlexマルチプレックスアッセイは、従来のサンドウィッチELISAの実行に要する時間で、大幅に少ないサンプル量を使用して、より多くのターゲットタンパク質をプロファイルできます。

ProcartaPlexマルチプレックスパネルは、6種の生物種(ヒト、マウス、ラット、ヒト以外の霊長類、ブタ、イヌ)にわたって複数のフォーマットで利用可能です。詳細および利用可能な製品については、thermofisher.com/procartaplex をご覧ください。

研究用途にのみご使用ください。診断目的には使用できません。
仕様
アッセイ範囲分析証明書を参照
アッセイ感度15%未満
使用対象 (装置)Luminex™ 装置
フォーマットMultiplex Kit
製品ラインProcartaPlex
サンプルタイプ血清、血漿、細胞培養上清, Plasma, Cell Culture Supernatants
サンプル量血清、血漿:25 μL、CCS:50 μL
出荷条件湿氷
CombinabilityCombinable
製品タイプマルチプレックスパネル
数量96テスト
Research AreaImmunology, Cytokines, Chemokines
Non-Human Primate
Unit SizeEach
組成および保存条件
  • NHP標準ミックスA(凍結乾燥)バイアル2本
  • キャプチャービーズミックスA(1X)バイアル1本
  • キャプチャービーズミックスB(1X)バイアル1本
  • キャプチャービーズミックスC(1X)バイアル1本
  • ビオチン化検出抗体ミックスA(50X)バイアル1本
  • ビオチン化検出抗体ミックスB(50X)バイアル1本
  • ビオチン化検出抗体ミックスC(50X)バイアル1本
  • 読み取りバッファー(1X)ボトル1本
  • 洗浄バッファー(10X)ボトル1本
  • ストレプトアビジン-PE(1X)ボトル1本
  • ユニバーサルアッセイバッファー(1X)ボトル1本
  • 検出抗体希釈液(1X)ボトル1本
  • 8チューブストリップ
  • 接着フィルム
  • 平底96ウェルプレート、黒

よくあるご質問(FAQ)

What is the size of the Luminex beads you currently use?

The beads used in our Luminex instrument-compatible ProcartaPlex and QuantiGene Plex assays are 6.5 micron superparamagnetic beads.

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Protein Assays and Analysis Support Center.

I am interested in performing Luminex assays using BioSource kits, and I have a Luminex xMAP system. Besides the kits and system, what other reagents and equipment will I need?

The following is a list of general lab supplies that are required for running BioSource immunoassays on the Luminex xMAP system:
1) Sonicating water bath
2) Orbital shaker
3) Vortexer
4) Repeating and/or multi-channel pipetter (not required, but recommended)
5) Calibrated adjustable precision pipettes, with disposable plastic tips
6) Glass/plastic tubes and racks for preparing reagents
7) Graduated cylinder and container for preparing wash solution
8) Aluminum foil
9) Deionized or distilled water.

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Do the Luminex beads require special care in handling?

The Luminex beads should be protected from light because they are susceptible to photobleaching. We recommend protecting the beads by keeping containers covered with aluminum foil during all incubation steps, and exercising care during handling. The beads should not be frozen, subjected to excessive heat, or exposed to organic solvents.

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Why would the Luminex acquisition software display "Sample Empty" messages during analysis?

(1) The user did not properly aliquot the diluted beads, such that no beads were actually added to the wells (make sure that the bead concentrates are sonicated and vortexed well, then check the pipet tip to ensure that air bubbles were not drawn up)
(2) The user missed loading diluted beads to some wells, which is likely since the small volume is clear and difficult to visualize in the clear plastic plate (we have now addressed this customer difficulty by coloring each of the Buffer Reagent Kit components)
(3) The user applied too much vacuum pressure at some point during the wash steps, or allowed the pressure to spike even once, such that the filter membrane tore in a few wells releasing the beads (make sure that the vacuum manifold pressure is kept below 5mm/in Hg, depending on their system -- a good rule of thumb is that it should take a full 3-second count to GENTLY empty the wells of 200uL)
(4) The user did not properly sonicate and vortex the beads prior to dilution, such that the percent of bead aggregation was high and the instrument was unable to find enough single beads to meet the events/bead value designated by the customer (make sure that the Bead Concentrate tube is put into the waterbath all the way to the cap, since the tube is hollow until the top third)
(5) The user lost beads by shaking the plate too aggressively or handling it improperly (make sure that the orbital shaker is set to a speed that allows for maximum vortex in the wells without spillage)
(6) The user exposed the beads to an excess of light during storage or running of the assay, such that some but not all of the beads were photobleached and therefore falling outside the acceptable range for each bead region (make sure that the plate is covered on the top/sides with foil throughout the assay, away from Windows and spotlights, and that the bead component of the kits is stored in the dark)*
(7) There was a clog in the sample needle, such that the instrument was unable to take up enough sample to meet the number of events requested per bead region (suggest that the user follow the manual instructions for dislodging a clog, which include several Back Flush steps and may require removal of the needle for sonication with probe alignment).

* Some of the older Antibody Bead Kits still have clear plastic tops instead of black ones. In cases where customers store kits in lit refrigerators, or keep them open on the lab bench, even a few hours of light exposure is enough to photobleach beads. It is important to note, in general, that higher number bead regions are more susceptible to photobleaching. In order to draw conclusions about the source of the difficulty, we would ask to see the data, specifically the Masterplex QT file, which would enable us to examine the pattern of "Sample Empty" occurrences in addition to the bead counts per well.

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What are the Luminex beads made of?

The beads are made of polystyrene.

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引用および参考文献 (2)

引用および参考文献
Abstract
TLR-adjuvanted nanoparticle vaccines differentially influence the quality and longevity of responses to malaria antigen Pfs25.
Authors:Thompson EA, Ols S, Miura K, Rausch K, Narum DL, Spångberg M, Juraska M, Wille-Reece U, Weiner A, Howard RF, Long CA, Duffy PE, Johnston L, O'Neil CP, Loré K
Journal:JCI Insight
PubMed ID:29769448
Transmission-blocking vaccines (TBVs) are considered an integral element of malaria eradication efforts. Despite promising evaluations of Plasmodium falciparum Pfs25-based TBVs in mice, clinical trials have failed to induce robust and long-lived Ab titers, in part due to the poorly immunogenic nature of Pfs25. Using nonhuman primates, we demonstrate that multiple ... More
SARS-CoV-2 infection of African green monkeys results in mild respiratory disease discernible by PET/CT imaging and shedding of infectious virus from both respiratory and gastrointestinal tracts.
Authors:Hartman AL, Nambulli S, McMillen CM, White AG, Tilston-Lunel NL, Albe JR, Cottle E, Dunn MD, Frye LJ, Gilliland TH, Olsen EL, O'Malley KJ, Schwarz MM, Tomko JA, Walker RC, Xia M, Hartman MS, Klein E, Scanga CA, Flynn JL, Klimstra WB, McElroy AK, Reed DS, Duprex WP
Journal:PLoS Pathog
PubMed ID:32946524
Vaccines are urgently needed to combat the global coronavirus disease 2019 (COVID-19) pandemic, and testing of candidate vaccines in an appropriate non-human primate (NHP) model is a critical step in the process. Infection of African green monkeys (AGM) with a low passage human isolate of SARS-CoV-2 by aerosol or mucosal ... More