E-Gel™ SizeSelect™ II Agarose Gels, 2%
E-Gel™ SizeSelect™ II Agarose Gels, 2%
Invitrogen™

E-Gel™ SizeSelect™ II Agarose Gels, 2%

E-Gel SizeSelect IIアガロースゲルを用いた電気泳動は、次世代シーケンシング(NGS)アプリケーション用のDNAライブラリの正確なサイズ選択のための便利な方法です。E-Gel SizeSelect IIゲルを使用すると、ライブラリ構築のためにDNAを分離して回収することができます詳細を見る
製品番号(カタログ番号)数量
G66101210 gels
製品番号(カタログ番号) G661012
価格(JPY)
33,500
Each
お問い合わせください ›
数量:
10 gels
E-Gel SizeSelect IIアガロースゲルを用いた電気泳動は、次世代シーケンシング(NGS)アプリケーション用のDNAライブラリの正確なサイズ選択のための便利な方法です。E-Gel SizeSelect IIゲルを使用すると、ライブラリ構築のためにDNAを分離して回収することができます。これには、ロード、操作、および回収の3つの簡単なステップがあります。

E-Gel SizeSelect IIアガロースゲルを使用すると、以下のことが可能になります。
時間短縮—電気泳動後のゲルおよびゲル精製の調整が不要です
DNA回収の簡素化—精製したDNAを回収ウェルからピペットで直接回収します
結果の一貫性を向上—正確で一貫したサイズ選択を実現します

簡単な3ステップによる迅速で正確なDNAサイズ選択
E-Gel SizeSelect IIプレキャストゲルを用いたDNAフラグメントライブラリのサイズ選択は、従来のゲル精製を排除したシンプルな3ステップの手順です。目的のDNAバンドを抽出するには、サンプルをローディングウェルにロードし、バンドが回収ウェルに到達するまでゲルを泳動し、サンプルを回収します。得られたフラグメントライブラリは、シャープなフラグメントカットオフを示し、再精製をせずにNGSワークフローですぐに使用できます。1つのローディングウェルから複数のバンドを同じゲル実施中に収集できます。

E-Gel SizeSelect IIゲルから抽出されたDNAフラグメントライブラリは、Ion Torrentシーケンシングワークフローに対応しています。

サンプルのリアルタイム制御
SYBR Gold II DNAゲル染色剤はゲル自体に組み込まれており、E-Gelパワースナップ電気泳動装置の青色光トランスイルミネーターでDNAバンドの移動の進行を視覚的にモニターできます。ゲルには参照マークが付いているため、サンプル回収ステップの前にサンプルをより適切に制御できます。ターゲットDNAが回収ウェルを通過した場合、リバースゲルプロトコルによりDNAバンドの再回収が可能です。

核酸マーカー
E-Gel DNAラダーの詳細›

結果の改善
可視化中にDNAサンプルをUV光に短時間曝露するだけでも、DNA損傷につながる可能性があります。E-Gel SizeSelect IIゲルを青色光トランスイルミネーターと併用することで、従来のゲル精製ワークフローと比較して、UVによる損傷のリスクを最小限に抑えることができます。回収ウェルからサンプルに直接アクセスできるため、ゲルバンドの切片の除去や、ゲル精製ステップ中にDNAが失われるリスクを回避できます。

研究用にのみ使用できます。診断用には使用いただけません。
仕様
Compatible LaddersE-Gel™ Sizing DNA Ladder
数量10 gels
出荷条件室温
ゲル濃度2%
ゲルタイプE-Gel
標識または色素SYBR Gold
製品タイプアガロースゲル
ウェル7ウェル
Unit SizeEach
組成および保存条件
室温保存。

よくあるご質問(FAQ)

I accidentally allowed my DNA to run past the collection wells for my E-Gel SizeSelect II or E-Gel CloneWell II agarose gels. What should I do?

You can use the Reverse E-Gel Program to run the band back into the collection gel.

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our Nucleic Acid Purification and Analysis Support Center.

My E-Gel agarose gel has speckles when viewed in the imager. What should I do?

Here are some suggestions:

- Try cleaning the cassettes with alcohol and Kimwipes wipers.
- Try cleaning the camera lens.
- Try to adjust the exposure time and brightness options of the documentation system you are using.

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My sample is leaking from the wells when running my E-Gel agarose gels. What happened?

Please ensure that you have not overloaded the well and that the wells were not damaged during comb removal.

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I accidentally stored my E-Gel agarose gels at 4 degrees C instead of room temperature. Can I still use them?

While we recommend storage at room temperature, these gels will still be usable. Bring the gels to room temperature prior to the run for optimal conditions.

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within ourNucleic Acid Gel Electrophoresis and Blotting Support Center.

What loading buffer should I use for my E-Gel agarose gels?

Loading buffer is optional. Samples can be loaded directly into the wells if no buffer is used, or you can dilute them with deionized water or TE buffer. If you want to use a loading buffer, please see the recipes below:

E-Gel agarose gels (including EX)
10 mM Tris-HCl, pH 7.5
1 mM EDTA
0.005% bromophenol blue
0.005% xylene cyanol FF
E-Gel CloneWell II and E-Gel SizeSelect II agarose gels
10 mM Tris-HCl, pH 7.5
1 mM EDTA

Alternatively, you can use 10X BlueJuice Gel Loading Buffer or TrackIt Loading Buffer. Dilute this buffer 50- to 200-fold to obtain optimal results with E-Gel agarose gels.

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