Competent Cell Sampler
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Invitrogen™

Competent Cell Sampler

コンピテントセルサンプラーキットには、便利なOne Shotフォーマットで4種類の異なる種のケミカルコンピテント大腸菌細胞のペアが含まれています。各シングルユース細胞バイアルはすぐに使用でき、余分なピペッティングステップや凍結融解サイクルが不要なため、形質転換効率が低下します。このキットを用い、ラボで使用するさまざまな種類のDNAに最適な菌株を評価してください。One Shot詳細を見る
製品番号(カタログ番号)数量
A104698x50 μL
製品番号(カタログ番号) A10469
価格(JPY)
36,800
Each
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数量:
8x50 μL
コンピテントセルサンプラーキットには、便利なOne Shotフォーマットで4種類の異なる種のケミカルコンピテント大腸菌細胞のペアが含まれています。各シングルユース細胞バイアルはすぐに使用でき、余分なピペッティングステップや凍結融解サイクルが不要なため、形質転換効率が低下します。このキットを用い、ラボで使用するさまざまな種類のDNAに最適な菌株を評価してください。

One Shot Mach1 T1ファージ耐性ケミカルコンピテント大腸菌細胞は、一般的な大腸菌細胞に比べて倍加時間が短縮されます。その結果、9時間以内にアンピシリン選択プレートに形質転換をプレーティングすると、Mach1コロニーがはっきりと見えます。一晩のコロニーから、4 時間の増殖後にミニプレップを実施できます。

Mach1コンピテント大腸菌細胞は、One Shotフォーマット(カタログ番号C86200)および中程度~高スループットのアプリケーション用の当社のMultiShot StripWellおよびFlexPlateフォーマット(C869601およびC8681201)に付属しています。

One Shot OmniMAX2 T1-ファージ耐性のあるケミカルコンピテント大腸菌細胞は、Gatewayテクノロジーを含めて、すべてのクローニングアプリケーションでの使用に最適です。1 µgのコントロールDNAを持つ5 x 109の形質転換体を備えたケミカルコンピテントOne Shotフォーマットで、最高の形質転換効率を実現します。mcrA、MRR、mcrBC、およびhsdRMS制限システムを排除して高い形質転換効率を実現することで、代表的なゲノムライブラリを便利なケミカルコンピテントフォーマットで構築できます。

OmniMAX 2細胞は、当社のOne Shotフォーマット(C854003)および中程度~高スループットのアプリケーション用の当社のMultiShot StripWellおよびFlexPlateフォーマット(C8581201)に付属しています。

OnesHot Stbl3ケミカルコンピテントセルは、不必要な相同組換えの頻度を低減し、長期間の末端反復(LTR)を含むレンチウイルスDNAなどの不安定なDNAのクローニングに最適です。Stbl3細胞からのDNA収量は、多くの場合、標準的なクローニング株に比べ10倍以上高くなります。

Stbl3ケミカルコンピテントセルは、One Shotフォーマット(C737303)および中程度~高スループットのアプリケーション用の当社のMultiShot StripWellおよびFlexPlateフォーマット(C739601およびC7381201)で使用できます。

One Shot TOP10細胞は、幅広いクローニング技術に最適です。これらは多くの場合、TOPOやGatewayクローニングキットなどの当社のクローニングおよび発現キットの多くに含まれており、GeneArt High-Q Stringsおよび Strings DNA断片およびライブラリを補完します。One Shot TOP10コンピテント大腸菌には、1×109 cfu/µgの超らせん型DNA形質転換効率が備わっているため、高効率クローニングとプラスミド増殖に最適です。コピー数の多いプラスミドの安定した複製が可能です。

TOP10ケミカルコンピテントセルは、One Shotフォーマット(C404003)および中程度~高スループットのアプリケーション用の当社のMultiShot StripWellおよびFlexPlateフォーマット(C409601およびC4081201)で使用できます。
研究用にのみ使用できます。診断用には使用いただけません。
仕様
菌株または酵母株Mach1、OmniMAX2、TOP10、Stbl3
濃度1 x 10^9細胞/mL
効率>1x10^9
製品ラインOne Shot
製品タイプCompetent Cell Sampler Kit
数量8x50 μL
出荷条件ドライアイス
フォーマットチューブ
E. coli
Unit SizeEach
組成および保存条件
コンピテント細胞サンプラーには、4種類の化学的コンピテント細胞株それぞれにOne Shot™フォーマットで2種類の形質転換が含まれています。-80℃で保存してください。

よくあるご質問(FAQ)

How do you recommend that I prepare my DNA for successful electroporation of E. coli?

For best results, DNA used in electroporation must have a very low ionic strength and a high resistance. A high-salt DNA sample may be purified by either ethanol precipitation or dialysis.

The following suggested protocols are for ligation reactions of 20ul. The volumes may be adjusted to suit the amount being prepared.

Purifying DNA by Precipitation: Add 5 to 10 ug of tRNA to a 20ul ligation reaction. Adjust the solution to 2.5 M in ammonium acetate using a 7.5 M ammonium acetate stock solution. Mix well. Add two volumes of 100 % ethanol. Centrifuge at 12,000 x g for 15 min at 4C. Remove the supernatant with a micropipet. Wash the pellet with 60ul of 70% ethanol. Centrifuge at 12,000 x g for 15 min at room temperature. Remove the supernatant with a micropipet. Air dry the pellet. Resuspend the DNA in 0.5X TE buffer [5 mM Tris-HCl, 0.5 mM EDTA (pH 7.5)] to a concentration of 10 ng/ul of DNA. Use 1 ul per transformation of 20 ul of cell suspension.

Purifying DNA by Microdialysis: Float a Millipore filter, type VS 0.025 um, on a pool of 0.5X TE buffer (or 10% glycerol) in a small plastic container. Place 20ul of the DNA solution as a drop on top of the filter. Incubate at room temperature for several hours. Withdraw the DNA drop from the filter and place it in a polypropylene microcentrifuge tube. Use 1ul of this DNA for each electrotransformation reaction.

When should DMSO, formamide, glycerol and other cosolvents be used in PCR?

Cosolvents may be used when there is a failure of amplification, either because the template contains stable hairpin-loops or the region of amplification is GC-rich. Keep in mind that all of these cosolvents have the effect of lowering enzyme activity, which will decrease amplification yield. For more information see P Landre et al (1995). The use of co-solvents to enhance amplification by the polymerase chain reaction. In: PCR Strategies, edited by MA Innis, DH Gelfand, JJ Sninsky. Academic Press, San Diego, CA, pp. 3-16.

Additionally, when amplifying very long PCR fragments (greater than 5 kb) the use of cosolvents is often recommended to help compensate for the increased melting temperature of these fragments.

Find additional tips, troubleshooting help, and resources within our PCR and cDNA Synthesis Support Center.