BODIPY™ 493/503 NHS Ester (Succinimidyl Ester)
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BODIPY™ 493/503 NHS Ester (Succinimidyl Ester)

BODIPY™ 493/503 ist ein leuchtend grün fluoreszierender Farbstoff mit ähnlicher Erregung und Emission wie die Farbstoffe Fluorescein (FITC) oder AlexaWeitere Informationen
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KatalognummerMenge
D21915 mg
Katalognummer D2191
Preis (EUR)
790,00
Each
Menge:
5 mg
Preis (EUR)
790,00
Each
BODIPY™ 493/503 ist ein leuchtend grün fluoreszierender Farbstoff mit ähnlicher Erregung und Emission wie die Farbstoffe Fluorescein (FITC) oder Alexa Fluor™ 488. Es hat einen hohen Extinktionskoeffizienten und eine hohe Fluoreszenzquantenausbeute und ist relativ unempfindlich gegenüber Polarität und pH-Schwankungen von Lösungsmitteln. Im Gegensatz zu den hochwasserlöslichen Fluorophoren Alexa Fluor™ 488 und Fluorescein (FITC) haben BODIPY™ Farbstoffe einzigartige hydrophobe Eigenschaften, die sich ideal zum Färben von Lipiden, Membranen und anderen lipophilen Verbindungen eignen. Der Farbstoff BODIPY™ 493/503 hat im angeregten Zustand eine relativ lange Lebensdauer (normalerweise 5 Nanosekunden oder länger), was für polarisationsbasierte Fluoreszenzassays und einen großen Zweiphotonenquerschnitt für die Multiphotonenanregung nützlich ist. Zusätzlich zu reaktiven Farbstoffformulierungen bieten wir BODIPY™ 493/503 an, der mit einer Vielzahl von Antikörpern, Peptiden, Proteinen, Tracern und Amplifikationssubstraten konjugiert ist, und für die Zellmarkierung und den Nachweis optimiert ist.

Der NHS-Ester (oder Succinimidylester) von BODIPY™ 493/503 ist das beliebteste Hilfsmittel für die Konjugierung dieses Farbstoffs mit einem Protein oder Antikörper. NHS-Ester können zur Markierung der primären Amine (R-NH2) von Proteinen, aminmodifizierten Oligonukleotiden und weiteren aminhaltigen Molekülen verwendet werden. Die daraus resultierenden BODIPY™ 493/503 Konjugate weisen helle Fluoreszenz, schmale Emissionsbandbreiten und eine relativ lange Lebensdauer des angeregten Zustands auf, was für Fluoreszenzpolarisierungsassays und Zweiphotonenanregungsmikroskopie (TPE) nützlich sein kann.

Dieser reaktive Farbstoff enthält einen C3-Alkyl-Spacer zwischen dem Fluorophor und der NHS-Estergruppe. Dieser Spacer hilft, den Fluorophor von seinem Anhaftungspunkt zu trennen und so die Interaktion des Fluorophors mit dem Biomolekül, an das er konjugiert ist, zu reduzieren.

Ausführliche Informationen zu diesem BODIPY™ 493/503 NHS-Ester:

Fluorophoretikett: BODIPY™ 493/503 Farbstoff
Reaktive Gruppe: NHS-Ester (Succinimidylester)
Reaktivität: Primäre Amine auf Proteinen und Liganden, aminmodifizierte Oligonukleotide
Anregungs-/Emissionsmaxima (Ex/Em) des Konjugats: 500/509 nm
Extinktionskoeffizient: 79.000 cm-1M-1
Molekulargewicht: 417,22

Typische Konjugationsreaktion
Aminreaktive Reagenzien können mit praktisch jedem Protein oder Peptid konjugiert werden (das mitgelieferte Protokoll ist für IgG-Antikörper optimiert). Die Reaktion ist auf beliebige Proteinmengen skalierbar, optimale Ergebnisse erzielen Sie jedoch bei einer Proteinkonzentration von mindestens 2 mg/ml. Wir empfehlen Versuche mit drei verschiedenen Markierungsgraden unter Verwendung von drei unterschiedlichen molaren Verhältnissen von reaktivem Reagenz zu Protein.

Der BODIPY™ NHS-Ester ist in der Regel in hochwertigem wasserfreiem Dimethylformamid (DMF) oder Dimethylsulfoxid (DMSO) aufgelöst. Die Reaktion erfolgt in 0,1–0,2 M Natriumbikarbonat-Puffer, pH-Wert 8,3, bei Raumtemperatur 1 Stunde lang. Da der pKa-Wert des Amino-Terminus niedriger ist als der der epsilon-Aminogruppe des Lysin, erreichen Sie möglicherweise eine stärker selektive Markierung des Amino-Terminus mit einem Puffer, der näher am neutralen pH-Wert liegt.

Konjugataufreinigung
Markierte Antikörper werden in der Regel von freiem BODIPY™ Farbstoff durch Einsatz einer Gel-Filtrationssäule wie Sephadex™ G-25, BioGel™ P-30 oder ähnlichem getrennt. Wählen Sie bei sehr großen bzw. kleinen Proteinen ein Gelfiltrationsmedium mit geeigneter molekularer Ausschlussgrenze (MWCO), oder entscheiden Sie sich für eine Reinigung per Dialyse. Wir bieten verschiedene Aufreinigungskits, die für unterschiedliche Mengen von Antikörperkonjugat optimiert sind:
Antikörperkonjugat-Aufreinigungskit für 0,5 – 1 mg (A33086)
Antikörperkonjugat-Aufreinigungskit für 20 – 50 µg (A33087)
Antikörperkonjugat-Aufreinigungskit für 50 – 100 µg (A33088)

Weitere Informationen zur Protein- und Antikörpermarkierung
Wir bieten eine breite Auswahl an Molecular Probes™ Antikörper- und Proteinmarkierungskits, passend zu Ihrem Ausgangsmaterial und Ihrer Experimentanordnung. Weitere Optionen finden Sie unter Antikörper-Markierungskits, oder nutzen Sie unser Auswahlwerkzeug für die Markierungschemie. Weitere Informationen zu unseren Markierungskits finden Sie unter Protein- und Nukleinsäuremarkierungskits—Kapitel 1.2 im Molecular Probes™ Handbuch.


’’’Wenn Sie in unserem Online-Katalog das Gesuchte nicht finden, erstellen wir gern für Sie ein Antikörper- oder Proteinkonjugat nach Ihren individuellen Vorgaben. Unser individualisierter Konjugationsservice arbeitet effizient und absolut vertraulich, und wir verbürgen uns für die Qualität unserer Arbeit. Wir sind ISO 9001:2000 zertifiziert.
Nur für Forschungszwecke. Nicht zur Verwendung bei diagnostischen Verfahren.
Specifications
Chemische ReaktivitätAmin
Emission509 nm
Anregung500 nm
Marker oder FarbstoffBODIPY™ 493⁄503
ProdukttypFarbstoff
Menge5 mg
Reaktiver TeilAktiv-Ester, Succinimidylester
VersandbedingungRaumtemperatur
MarkertypBODIPY Farbstoffe
ProduktlinieBODIPY
Unit SizeEach
Inhalt und Lagerung
Bei -5 bis -30 °C lagern und vor Licht schützen.

Häufig gestellte Fragen (FAQ)

What is the difference between BODIPY 493/503 (4,4-Difluoro-1,3,5,7,8-Pentamethyl-4-Bora-3a,4a-Diaza-s-Indacene) (Cat. No. D3922) and BODIPY 493/503 NHS Ester (Succinimidyl Ester) (Cat. No. D2191)?

BODIPY 493/503 NHS Ester (Succinimidyl Ester) (Cat. No. D2191) is the amine‐reactive derivative of BODIPY 493/503 (4,4‐Difluoro‐1,3,5,7,8‐Pentamethyl‐4‐Bora‐3a,4a‐Diaza‐s‐Indacene) (Cat. No. D3922). The reactive group allows for D2191 to be used as a labeling reagent to label proteins or other molecules to covalently attach the dye to accessible primary amines. If using this as a live cell reagent, the reactive group may allow for better retention as it will covalently attach to any primary amines on any cellular material it may come into contact with.

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Zitierungen und Referenzen (8)

Zitierungen und Referenzen
Abstract
Direct observation of specific messenger RNA in a single living cell under a fluorescence microscope.
Authors:Tsuji A, Koshimoto H, Sato Y, Hirano M, Sei-Iida Y, Kondo S, Ishibashi K
Journal:Biophys J
PubMed ID:10828002
'We observed the expression of human c-fos mRNA in a living transfected Cos7 cell under a fluorescence microscope by detecting hybrid formed with two fluorescently labeled oligodeoxynucleotides (oligoDNAs) and c-fos mRNA in the cytoplasm. Two fluorescent oligoDNAs were prepared, each labeled with a fluorescence molecule different from the other. When ... More
Synthesis and pharmacological activity of fluorescent histamine H1 receptor antagonists related to mepyramine.
Authors:Li L, Kracht J, Peng S, Bernhardt G, Buschauer A
Journal:Bioorg Med Chem Lett
PubMed ID:12657255
'Fluorescently labeled histamine H(1) receptor antagonists were synthesized starting from N-demethylmepyramine by introduction of omega-aminoalkyl chains (2-8 methylene groups in length) followed by derivatization of the terminal NH(2) group with various fluorophores (fluorescein, naphthofluorescein, rhodamine, tetramethylrhodamine, BODIPY, dansyl, and nitrobenzoxadiazole (NBD)). On the isolated guinea pig ileum and in a ... More
Microchip-based capillary electrochromatography using packed beds.
Authors:Jemere AB, Oleschuk RD, Harrison DJ
Journal:Electrophoresis
PubMed ID:12973805
'Integration of a packed column onto a microchip for performance of capillary electrochromatography (CEC) is described. The quartz device incorporated a cross-injector, and a double weir trapping design for formation of 1, 2 and 5 mm long CEC columns. Three fluorescent dyes were baseline-resolved with plate numbers of 330,(330,000 plates/m; ... More
Double-labeled donor probe can enhance the signal of fluorescence resonance energy transfer (FRET) in detection of nucleic acid hybridization.
Authors:Okamura Y, Kondo S, Sase I, Suga T, Mise K, Furusawa I, Kawakami S, Watanabe Y
Journal:Nucleic Acids Res
PubMed ID:11121494
'A set of fluorescently-labeled DNA probes that hybridize with the target RNA and produce fluorescence resonance energy transfer (FRET) signals can be utilized for the detection of specific RNA. We have developed probe sets to detect and discriminate single-strand RNA molecules of plant viral genome, and sought a method to ... More
Interactions between homopolypeptides and lightly cross-linked microgels.
Authors:Bysell H, Malmsten M,
Journal:Langmuir
PubMed ID:19061315
The relative importance of electrostatic and nonelectrostatic interactions in peptide-microgel systems was evaluated by micromanipulator-assisted light microscopy, confocal microscopy, and circular dichroism. For this purpose, the interaction of various homopolypeptides with lightly cross-linked polyelectrolyte gel particles ( approximately 70 microm in diameter) was studied with focus on peptide-induced microgel deswelling ... More