BODIPY™ 558/568 NHS Ester (Succinimidyl Ester)
BODIPY™ 558/568 NHS Ester (Succinimidyl Ester)
Invitrogen™

BODIPY™ 558/568 NHS Ester (Succinimidyl Ester)

El colorante BODIPY™ 558/568 es un colorante fluorescente rojo brillante. Tiene un alto coeficiente de extinción y rendimiento cuántico deMás información
Have Questions?
Número de catálogoCantidad
D22195 mg
Número de catálogo D2219
Precio (MXN)
-
Cantidad:
5 mg
El colorante BODIPY™ 558/568 es un colorante fluorescente rojo brillante. Tiene un alto coeficiente de extinción y rendimiento cuántico de fluorescencia y es relativamente insensible a la polaridad de los disolventes y al cambio de pH. A diferencia de los fluoróforos altamente solubles en agua de los colorantes Alexa Fluor™ 488 y la fluoresceína (FITC), los colorantes BODIPY™ tienen propiedades hidrofóbicas únicas ideales para la coloración de lípidos, membranas y otros compuestos lipofílicos. El colorante BODIPY™ 558/568 tiene una vida útil de estado excitado relativamente larga (normalmente 5 nanosegundos o más), lo cual es útil para ensayos basados en la polarización de fluorescencia y una sección transversal de dos fotones grande para la excitación multifotónica. Además de las formulaciones de colorante reactivo, ofrecemos el colorante BODIPY™ 558/568 conjugado con una serie de anticuerpos, péptidos, proteínas, trazadores y sustratos de amplificación optimizados para la detección y el etiquetado celular.

El éster de NHS (o éster de succinimidilo) de BODIPY™ 558/568 es la herramienta más utilizada para conjugar el colorante con una proteína o anticuerpo. Los ésteres de NHS se pueden usar para marcar aminas primarias (R-NH2) de proteínas, oligonucleótidos modificados por aminas y otras moléculas que contengan aminas. Los conjugados BODIPY™ 558/568 obtenidos presentan una fluorescencia brillante, unos anchos de banda de emisión estrechos y una vida útil de estado excitado relativamente larga, que puede ser útil para ensayos de polarización de fluorescencia y microscopia de excitación de dos fotones (TPE).

Este colorante reactivo contiene un espaciador de alquilo C3 entre el fluoróforo y el grupo éster NHS. Este espaciador ayuda a separar el fluoróforo de su punto de fijación y reduce potencialmente la interacción del fluoróforo con la biomolécula a la que se conjuga.

Información detallada sobre este éster de NHS BODIPY™ 558/568:

Etiqueta de fluoróforo: Colorante BODIPY™ 558/568
Grupo reactivo: éster de NHS (succinimidilo éster)
Reactividad: Aminas primarias en proteínas y ligandos, oligonucleótidos modificados con aminas
Ex/Em del conjugado: 559/568 nm
Coeficiente de extinción: 97.000 cm-1 M-1
Peso molecular: 443,23

Reacción de conjugación habitual
Los agentes aminorreactivos se pueden conjugar con prácticamente cualquier proteína o péptido (el protocolo proporcionado está optimizado para anticuerpos IgG). La reacción se puede ampliar para cualquier cantidad de proteína, pero la concentración de la proteína debe ser de, al menos, 2 mg/ml para obtener unos resultados óptimos. Recomendamos probar tres grados de etiquetado distintos, utilizando tres proporciones molares diferentes del reactivo en la proteína.

El éster de NHS BODIPY™ suele disolverse en dimetilformamida (DMF) anhidra o dimetilsulfóxido (DMSO) de gran calidad, y la reacción se lleva a cabo en un tampón de bicarbonato sódico de 0,1 a 0,2 M, con pH 8,3 y a temperatura ambiente durante 1 hora. Dado que la pKa de la amina terminal es inferior a la del grupo amino épsilon de lisina, puede realizar un etiquetado más selectivo de la terminal amina mediante un tampón más cercano al pH neutro.

Purificación del conjugado
Los anticuerpos marcados se separan normalmente del colorante BODIPY™ no unido mediante una columna de filtración en gel, como Sephadex™ G-25, BioGel™ P-30 o equivalente. Para proteínas mucho más o mucho menos voluminosas, seleccione un medio de filtración en gel con un corte de peso molecular adecuado o purifique por diálisis. Ofrecemos varios kits de purificación optimizados para diferentes cantidades de conjugado de anticuerpos:
Kit de purificación de conjugado de anticuerpos para 0,5-1 mg (A33086)
Kit de purificación de conjugado de anticuerpos para 20-50 µg (A33087)
Kit de purificación de conjugado de anticuerpos para 50-100 µg (A33088)

Más información sobre el etiquetado de proteínas y anticuerpos
Ofrecemos una amplia selección de kits de etiquetado de anticuerpos y proteínas Molecular Probes™ que se ajustan a su material de partida y a su configuración experimental. Consulte nuestros kits de etiquetado de anticuerpos o utilice nuestra herramienta de selección química de etiquetado para otras opciones. Para obtener más información acerca de nuestros kits de marcado, lea la sección 1.2 sobrekits para marcado de proteínas y ácidos nucleicos del manual de Molecular Probes™.

Creamos conjugados personalizados
Si no encuentra lo que busca en nuestro catálogo en línea, le prepararemos el conjugado de anticuerpos o proteínas que desee. Nuestro servicio de conjugación personalizada es eficiente y confidencial, y garantizamos la calidad de nuestro trabajo. Contamos con la certificación ISO 9001:2000.
Para uso exclusivo en investigación. No apto para uso en procedimientos diagnósticos.
Especificaciones
Reactividad químicaAmina
Emisión568 nm
Excitación559 nm
Etiqueta o tinteBODIPY™ 558⁄568
Tipo de productoTinte
Cantidad5 mg
Fracción reactivaEster activo, succinimidilo éster
Condiciones de envíoTemperatura ambiente
Tipo de etiquetaColorantes BODIPY
Línea de productosBODIPY
Unit SizeEach
Contenido y almacenamiento
Almacenar en el congelador (de – 5 a – 30 °C) y proteger de la luz.

Citations & References (9)

Citations & References
Abstract
E2A activity is induced during B-cell activation to promote immunoglobulin class switch recombination.
Authors:Quong MW, Harris DP, Swain SL, Murre C
Journal:EMBO J
PubMed ID:10562543
'The basic helix-loop-helix protein, E2A, is required for proper early B lymphopoiesis. Specifically, in E2A-deficient mice, B-cell development is blocked at the progenitor stage prior to the onset of immunoglobulin (Ig) V(D)J recombination. Here, we demonstrate that E2A plays an additional role during peripheral B lymphopoiesis. Upon activation of primary ... More
FRET analysis of protein conformational change through position-specific incorporation of fluorescent amino acids.
Authors:Kajihara D, Abe R, Iijima I, Komiyama C, Sisido M, Hohsaka T
Journal:Nat Methods
PubMed ID:17060916
'We designed and synthesized new, fluorescent, non-natural amino acids that emit fluorescence of wavelengths longer than 500 nm and are accepted by an Escherichia coli cell-free translation system. We synthesized p-aminophenylalanine derivatives linked with BODIPY fluorophores at the p-amino group and introduced them into streptavidin using the four-base codon CGGG ... More
Flow cytometry-based biosensor for detection of multivalent proteins.
Authors:Song X, Shi J, Swanson B
Journal:Anal Biochem
PubMed ID:10933853
'Microsphere-based flow cytometric detection of cholera toxin (CT) through distance-dependent fluorescence resonant energy transfer (FRET) has been developed. Simultaneous double-fluorescence changes induced by multivalent interactions between CT and fluorophore (both fluorescence donor and acceptor)-labeled ganglioside GM1 on a biomimetic membrane surface (supported bilayers of phospholipids) can be measured by a ... More
ER-Tracker dye and BODIPY-brefeldin A differentiate the endoplasmic reticulum and golgi bodies from the tubular-vacuole system in living hyphae of Pisolithus tinctorius.
Authors:Cole L, Davies D, Hyde GJ, Ashford AE
Journal:J Microsc
PubMed ID:10692127
Two fluorochromes, ER-TrackerTM Blue-White DPX dye and the fluorescent brefeldin A (BFA) derivative, BODIPY-BFA, label the endoplasmic reticulum (ER) in hyphal tips of Pisolithus tinctorius and allow its differentiation from the tubular-vacuole system at the light microscope level in living cells. The ER-Tracker dye labels a reticulate network similar in ... More
Ultrasensitive hybridization analysis using fluorescence correlation spectroscopy.
Authors:Kinjo M, Rigler R
Journal:Nucleic Acids Res
PubMed ID:7784185
The hybridization of fluorescently tagged 18mer deoxyribonucleotides with complementary DNA templates was analysed by fluorescence correlation spectroscopy (FCS) in a droplet under an epi-illuminated fluorescence microscope at the level of single molecules. The interaction can be monitored by the change in the translational diffusion time of the smaller (18mer) primer ... More