染色质免疫沉淀 (ChIP)

染色质免疫沉淀 (ChIP) 是一种用于表观遗传学研究的技术,可以快速反映蛋白质-DNA 相互作用。 想要获得理想的结果,选择适合的抗体固然很关键,ChIP 流程中所有步骤也很重要。 该技术利用了多种分子生物学和蛋白质组学方法。

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开始 ChIP 之前需要考虑的三件事

查找适合您的 ChIP 实验的抗体非常重要。 没有抗体适合于所有应用,您需要确保自己的抗体适用于 ChIP,并且对于靶标具有特异性。 需要考虑的方面如下:

抗体验证*

如果抗体已经经过 ChIP 验证,您可以根据生产商的产品指南和任何已发表的参考资料来指导您的实验。 但在某些情况下,您的靶标可能尚未经过 ChIP 实验验证。

如果抗体经过免疫沉淀 (IP) 验证,则极有可能适用于 ChIP。 其他要求抗体识别天然状态抗原的方法也可以作为参考,例如免疫荧光 (IF),免疫细胞化学 (ICC) 和免疫组织化学 (IHC)。

如果抗体尚未经过 ChIP 验证,ChIP-western 可以作为很好的参考。 ChIP-western 不仅可以确保抗体能够沉淀目标蛋白质,还可提供其特异性信息。 虽然 ChIP-western 工作流程与包含 IP 步骤的 ChIP 相同,比较耗费人力,但 ChIP-westerns 可以与 ChIP 同时并行,从 IP 中腾出一小部分进行 ChIP-western,省下的其他部分可用于 ChIP。 在免疫沉淀出目标蛋白质后,不要洗脱 DNA,直接通过煮沸从磁珠上洗脱下蛋白质并进行免疫印迹。 用针对相同靶标的不同抗体检测印迹以证明您选择的抗体能识别目标蛋白的表位并能免疫沉淀目标蛋白质。 此外,如果您可以使用封闭肽,在肽存在下 IP 无效或者观察到效率显著降低,则可以确认抗体的特异性。

抗体特异性

抗体的特异性是一个日益增长且被越来越多科研工作者关注和理解的问题,特别是在 ChIP-seq 中。Invitrogen 抗体经过两步检测法: 功能性应用验证和靶向特异性验证。 功能性应用验证提供了抗体能否在 ChIP 中发挥作用的信息。 靶向特异性验证确保抗体能识别目标靶蛋白。 这些检测可以通过以下几种方法实现,包括使用敲除和敲低细胞系,处理改变目标靶蛋白表达水平的细胞,目标靶蛋白相对表达(如果是差异表达),以及免疫沉淀 - 质谱法联用(IP-MS)。 Invitrogen 抗体已通过这些技术中的其中一项验证特异性,并在我们的网站上有高级验证徽章。

剪切染色质使其变得可溶,并决定实验的分辨率。 理想的片段大小为 200 至 800bp。 然而染色质剪切是难以控制的,而且片段大小取决于细胞密度、交联程度和细胞类型。 因此,当务之急是保持实验操作之间的一致性,并且需要针对每种细胞类型优化剪切条件。

染色质酶促剪切

微球菌核酸酶 (MNase) 可以消化未结合蛋白质的 DNA,通常用于核小体定位绘图。 酶促染色质剪切不需要专门的设备,通常是可重复的(虽然需要根据细胞类型进行优化),并且手动操作时间最短。 Mnase 的一个主要缺点是它不是随机切割,并且对于消化 DNA 有序列偏好。 此外,酶促剪切不适用于难裂解的细胞,因为酶不能有效地进入细胞。

染色质机械剪切

超声处理通常用于染色质剪切,因为它可以产生随机片段。 由于超声处理使用能量来破坏染色质,因此它可以用于难裂解的细胞。 同酶促剪切一样,机械剪切需要根据细胞类型优化,但与酶剪切不同的是,超声处理需要大量的手动操作时间。

判断您的 ChIP 实验能否成功是极具挑战性的。 理想情况下,您希望确定 ChIP 中富集的区域(即蛋白质结合的 DNA 区域)和 ChIP 中匮乏的区域(即缺少蛋白质的 DNA 区域))。 确定这些区域后,您需要识别并测试该区域的引物。 引物应扩增 100 至 200bp 的区域,扩增效率为 90% 至 105%。

有时您不知道蛋白质的结合位点,进行 ChIP-seq 可以了解有关您的目标蛋白质的更多信息。 为了确保您的 ChIP 实验有效,您可以比较使用和不用抗体时沉淀的 DNA 数量,抗体存在时 DNA 数量明显较多。 此外,ChIP-western(见上文)可以确保您的抗体沉淀出靶标蛋白的表位。


通过五个步骤获得理想 ChIP 结果

考虑这五个经过验证的步骤可以帮助确保您获得有意义的结果:

交联和裂解

第一步对时间要求严格并且需要优化。 体内共价交联稳定蛋白质-DNA相互作用并于特定时间点进行分析。 通常采用甲醛交联,加入甘氨酸以终止反应。 交联剂渗透到完整细胞中并将蛋白质-DNA复合物锁定在一起从而进行分析。 交联剂在整个过程中保持复合物稳定,但其作用必须是可逆的才能用于 ChIP。 一些非常稳定的蛋白质-DNA 相互作用则不需要交联。

接下来,使用裂解液透化细胞膜,释放细胞组分,然后蛋白质-DNA复合物变得可溶。 去除细胞溶质蛋白以减少背景信号并增加灵敏度。

注意: 此时可以停止 ChIP 测定。 经过交联,淬灭和洗涤细胞沉淀后,将裂解物于 -80℃ 储存。

用于交联和裂解的推荐产品:

建议

  • 使用的交联剂类型取决于需要观察的相互作用的类型
  • 交联不充分,以及与甲醛过度交联,会增加背景信号并导致 DNA 丢失
  • 过度交联会影响抗原的结合,掩盖表位,妨碍超声处理
  • 在显微镜下比较样品前后变化,检查细胞裂解的效率
  • 不同类型的细胞有不同严格程度的裂解要求
  • 如果在裂解中使用超声处理,应将染色质置于在冰上并将脉冲限制在 30 秒以内,以避免蛋白质因过热而变性

染色质片段化

细胞核材料片段化是获得良好的 ChIP 分辨率的关键因素,理想情况下的片段大小在 200 到 800 bp对之间。 剪切是最难控制的步骤之一。 通过超声处理和/或核酸酶/酶促消化可以实现剪切,各有利弊。 超声处理需要大量的手动操作时间,但非常适合难以裂解的细胞;酶促消化不需要手动操作,适用于大量样品的处理,但其剪切位点不是随机的。 两种方法都需要根据具体细胞系进行优化。

注意: 此时可以停 止ChIP。 经过剪切/消化染色质后,可以将样品于 -80°C 储存。避免反复冻融。

用于 DNA 消化的推荐产品:

建议

  • 首次操作需根据样品细胞系优化片段化条件
  • 无论选择何种消化方法,确保染色质长度处于实验方法的理想范围内
  • 请在低功率下进行多次脉冲超声波处理,并全程将样品置于冰上以实现高效片段化
  • 通过降低超声功率来防止起泡
  • 优化核酸酶消化时间、浓度和温度
  • 可以联合使用超声处理和核酸酶消化

免疫沉淀

使用抗体捕获蛋白质-DNA 复合物中的目标蛋白质是实验成功的关键因素。 抗体免疫沉淀并从细胞核组分中分离蛋白质,去除不相关的细胞物质。

多克隆抗体具有识别多个表位的优点,但是其批次差异较大并且来源有限。 我们的重组单克隆抗体几乎消除了批次之间的差异并且来源广泛,但它们可以识别的蛋白质构象有限。 我们的重组寡克隆抗体优于前两种产品,由于它们是重组单克隆抗体的集合,因此可以识别多个表位,批次间差异小并且可重复使用。

如果针对某些靶标没有可用的抗体,则可以使样品表达与亲和标签(HA、Myc、His 等)融合的蛋白质,然后使用针对亲和标签的抗体进行免疫沉淀。

使用抗体结合磁珠完成所得抗体-蛋白质-DNA复合物的纯化。 经过孵育后,充分洗涤磁珠-抗体-蛋白质-DNA复合物,纯化并洗脱蛋白质-DNA复合物。

查找适合您的 ChIP 应用的抗体:

Primary Antibodies reference component

用于免疫沉淀的推荐产品:

参阅所有的免疫沉淀产品 产品选择互动指南

建议

  • 并非所有抗体都适用于 ChIP。 选择已经证明适合 ChIP 或 IP 的抗体,或者已经经过应用验证的抗体。 IHC 和 IF 是证明抗体是否适合 ChIP 的合理良好佐证。
  • 抗体浓度做梯度测试,实现最佳的信噪比。
  • 洗涤液浓度可能影响蛋白结合、信噪比和背景。
  • 为此,需要使用一种“非抗体”对照,以便区分 ChIP 信号和背景。

制备 DNA

现在含有目标蛋白质的染色质片段已分离,需要解交联并纯化 DNA。 解交联通常采用高热孵育和/或消化来完成。

为了获得更纯的 DNA 样品,建议使用 RNase A 进行处理。 从剩余的蛋白质中纯化 DNA 时,应使用苯酚:氯仿提取或离心柱进行 DNA 纯化。

注意: 此时可以停 止ChIP。 经过解交联和/或 DNA 纯化后,可以将样品于 -20°C 储存。

用于 DNA 制备的推荐产品:

建议

  • 如果您使用的体系所含 RNA 比 DNA 多(如酵母),则必须经过 RNA 酶处理
  • 按照 DNA 制备所述处理从染色质片段化中收集的等分试样,通过琼脂糖凝胶电泳来确认所需的片段化大小

定量 DNA

在该步骤中,通过 qPCR 定量纯化的 DNA 产物,可以使用 NanoDrop 分光光度计、Qubit 荧光计或其他分光光度法实现。 通过 qPCR,您可以确定目标蛋白是否存在于特定位点。 SYBR green 荧光染料是使用最广泛的基于 DNA 的 qPCR 化合物。 SYBR green 只有在与双链 DNA (dsDNA) 结合时才发出荧光,荧光强度与 dsDNA 量成正比。 据此您可以定量 DNA 在某些目标区域的富集程度。 该步骤需要优化引物组以获得准确的定量。

NanoDrop 分光光度计提供了一种非常简单的 DNA 定量方法,并使用 230/260 nm 吸光度比率评估其他溶剂污染物。

Qubit 荧光计可以准确定量低水平的纯化 DNA,并可用于在 qPCR 之前对样品进行标准化或测序。

免费下载实时荧光定量 PCR 手册

用于 DNA 定量的推荐产品:

建议

  • 确定基因组中预计会富集和缺失 ChIP 靶标的区域
  • 为这些区域设计引物,确保扩增效率为 90% 至 105%
  • 如果不知道目标蛋白结合的特定区域或其是否在任何地方结合,可以进行 ChIP-western
  • 即使ChIP之后要做NGS,也应在测序之前执行 qPCR 以确认实验有效

交联和裂解

第一步对时间要求严格并且需要优化。 体内共价交联稳定蛋白质-DNA相互作用并于特定时间点进行分析。 通常采用甲醛交联,加入甘氨酸以终止反应。 交联剂渗透到完整细胞中并将蛋白质-DNA复合物锁定在一起从而进行分析。 交联剂在整个过程中保持复合物稳定,但其作用必须是可逆的才能用于 ChIP。 一些非常稳定的蛋白质-DNA 相互作用则不需要交联。

接下来,使用裂解液透化细胞膜,释放细胞组分,然后蛋白质-DNA复合物变得可溶。 去除细胞溶质蛋白以减少背景信号并增加灵敏度。

注意: 此时可以停止 ChIP 测定。 经过交联,淬灭和洗涤细胞沉淀后,将裂解物于 -80℃ 储存。

用于交联和裂解的推荐产品:

建议

  • 使用的交联剂类型取决于需要观察的相互作用的类型
  • 交联不充分,以及与甲醛过度交联,会增加背景信号并导致 DNA 丢失
  • 过度交联会影响抗原的结合,掩盖表位,妨碍超声处理
  • 在显微镜下比较样品前后变化,检查细胞裂解的效率
  • 不同类型的细胞有不同严格程度的裂解要求
  • 如果在裂解中使用超声处理,应将染色质置于在冰上并将脉冲限制在 30 秒以内,以避免蛋白质因过热而变性

染色质片段化

细胞核材料片段化是获得良好的 ChIP 分辨率的关键因素,理想情况下的片段大小在 200 到 800 bp对之间。 剪切是最难控制的步骤之一。 通过超声处理和/或核酸酶/酶促消化可以实现剪切,各有利弊。 超声处理需要大量的手动操作时间,但非常适合难以裂解的细胞;酶促消化不需要手动操作,适用于大量样品的处理,但其剪切位点不是随机的。 两种方法都需要根据具体细胞系进行优化。

注意: 此时可以停 止ChIP。 经过剪切/消化染色质后,可以将样品于 -80°C 储存。避免反复冻融。

用于 DNA 消化的推荐产品:

建议

  • 首次操作需根据样品细胞系优化片段化条件
  • 无论选择何种消化方法,确保染色质长度处于实验方法的理想范围内
  • 请在低功率下进行多次脉冲超声波处理,并全程将样品置于冰上以实现高效片段化
  • 通过降低超声功率来防止起泡
  • 优化核酸酶消化时间、浓度和温度
  • 可以联合使用超声处理和核酸酶消化

免疫沉淀

使用抗体捕获蛋白质-DNA 复合物中的目标蛋白质是实验成功的关键因素。 抗体免疫沉淀并从细胞核组分中分离蛋白质,去除不相关的细胞物质。

多克隆抗体具有识别多个表位的优点,但是其批次差异较大并且来源有限。 我们的重组单克隆抗体几乎消除了批次之间的差异并且来源广泛,但它们可以识别的蛋白质构象有限。 我们的重组寡克隆抗体优于前两种产品,由于它们是重组单克隆抗体的集合,因此可以识别多个表位,批次间差异小并且可重复使用。

如果针对某些靶标没有可用的抗体,则可以使样品表达与亲和标签(HA、Myc、His 等)融合的蛋白质,然后使用针对亲和标签的抗体进行免疫沉淀。

使用抗体结合磁珠完成所得抗体-蛋白质-DNA复合物的纯化。 经过孵育后,充分洗涤磁珠-抗体-蛋白质-DNA复合物,纯化并洗脱蛋白质-DNA复合物。

查找适合您的 ChIP 应用的抗体:

用于免疫沉淀的推荐产品:

参阅所有的免疫沉淀产品 产品选择互动指南

建议

  • 并非所有抗体都适用于 ChIP。 选择已经证明适合 ChIP 或 IP 的抗体,或者已经经过应用验证的抗体。 IHC 和 IF 是证明抗体是否适合 ChIP 的合理良好佐证。
  • 抗体浓度做梯度测试,实现最佳的信噪比。
  • 洗涤液浓度可能影响蛋白结合、信噪比和背景。
  • 为此,需要使用一种“非抗体”对照,以便区分 ChIP 信号和背景。

制备 DNA

现在含有目标蛋白质的染色质片段已分离,需要解交联并纯化 DNA。 解交联通常采用高热孵育和/或消化来完成。

为了获得更纯的 DNA 样品,建议使用 RNase A 进行处理。 从剩余的蛋白质中纯化 DNA 时,应使用苯酚:氯仿提取或离心柱进行 DNA 纯化。

注意: 此时可以停 止ChIP。 经过解交联和/或 DNA 纯化后,可以将样品于 -20°C 储存。

用于 DNA 制备的推荐产品:

建议

  • 如果您使用的体系所含 RNA 比 DNA 多(如酵母),则必须经过 RNA 酶处理
  • 按照 DNA 制备所述处理从染色质片段化中收集的等分试样,通过琼脂糖凝胶电泳来确认所需的片段化大小

定量 DNA

在该步骤中,通过 qPCR 定量纯化的 DNA 产物,可以使用 NanoDrop 分光光度计、Qubit 荧光计或其他分光光度法实现。 通过 qPCR,您可以确定目标蛋白是否存在于特定位点。 SYBR green 荧光染料是使用最广泛的基于 DNA 的 qPCR 化合物。 SYBR green 只有在与双链 DNA (dsDNA) 结合时才发出荧光,荧光强度与 dsDNA 量成正比。 据此您可以定量 DNA 在某些目标区域的富集程度。 该步骤需要优化引物组以获得准确的定量。

NanoDrop 分光光度计提供了一种非常简单的 DNA 定量方法,并使用 230/260 nm 吸光度比率评估其他溶剂污染物。

Qubit 荧光计可以准确定量低水平的纯化 DNA,并可用于在 qPCR 之前对样品进行标准化或测序。

免费下载实时荧光定量 PCR 手册

用于 DNA 定量的推荐产品:

建议

  • 确定基因组中预计会富集和缺失 ChIP 靶标的区域
  • 为这些区域设计引物,确保扩增效率为 90% 至 105%
  • 如果不知道目标蛋白结合的特定区域或其是否在任何地方结合,可以进行 ChIP-western
  • 即使ChIP之后要做NGS,也应在测序之前执行 qPCR 以确认实验有效

 



*“验证”或类似的表达仅指用于功能测试的研究用途抗体,旨在确认该抗体是否可用于指定研究技术。 它不能确保产品经过临床或诊断用途验证。